References

vavilov

Вавиловский журнал генетики и селекции

Vavilov Journal of Genetics and Breeding

2500-3259

Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the RAS

10.18699/VJ15.041

vavilov-414

Research Article

БИОТЕХНОЛОГИЯ МИКРООРГАНИЗМОВ

Plant genetics and breeding

Идентификация генов Sr у новых источников устойчивости мягкой пшеницы к расе стеблевой ржавчины Ug99 с использованием молекулярных маркеров

Identification of Sr genes in new common wheat sources of resistance to stem rust race Ug99 using molecular markers

Баранова

О. А.

Baranova

O. A.

baranova_oa@mail.ru

Лапочкина

И. Ф.

Lapochkina

I. F.

inna-lapochkina@yandex.ru

Анисимова

А. В.

Anisimova

A. V.

Гайнуллин

Н. Р.

Gajnullin

N. R.

Иорданская

И. В.

Iordanskaya

I. V.

Макарова

И. Ю.

Makarova

I. Yu.

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений», Санкт-Петербург, Пушкин, РоссияРоссияAll-Russia Institute for Plant Protection (FSBSI VIZR), Saint-Petersburg, Pushkin, RussiaRussian Federation

Государственное научное учреждение Московский научно-исследовательский институт сельского хозяйства «Немчиновка», Московская область, РоссияРоссияMoscow Agricultural Research Institute «Nemchinovka», Moscow Oblast, RussiaRussian Federation

2015

29112015

193316322

2015

Баранова О.А., Лапочкина И.Ф., Анисимова А.В., Гайнуллин Н.Р., Иорданская И.В., Макарова И.Ю.

Baranova O.A., Lapochkina I.F., Anisimova A.V., Gajnullin N.R., Iordanskaya I.V., Makarova I.Y.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/414

В связи с угрозой проникновения на территорию Российской Федерации агрессивной расы возбудителя стеблевой ржавчины Puccinia graminis Pers. f. sp. tritici Eriks. et Henn, Ug99 необходим поиск новых доноров устойчивости к этой опасной болезни. У 6 источников устойчивости к стеблевой ржавчине, в том числе к расе Ug99, имеющих в своей родословной генетический материал чужеродных видов (Aegilops speltoides, Aе. triuncialis, Secale cereale), проведена идентификация 17 генов Sr с использованием молекулярных маркеров как к эффективным против расы Ug99 генам (Sr2, Sr22, Sr24, Sr25, Sr26, Sr32, Sr35, Sr36, Sr39, Sr40, Sr44 и Sr47), так и к не эффективным, но обеспечивающим устойчивость к местным популяциям возбудителя стеблевой ржавчины (Sr9a, Sr15, Sr17, Sr19 и Sr31). На основании анализа молекулярных маркеров постулировано присутствие в изученных линиях от 2 до 7 известных генов Sr: в 113/00i-4 – Sr2, Sr36, Sr39, Sr40, Sr44, Sr47 и Sr15; в 119/4-06rw – Sr22, Sr32, Sr44, Sr9a, Sr17 и Sr19; в GT 96/90 – Sr24, Sr36, Sr40, Sr47, Sr15, Sr17 и Sr31; в 9/00w – Sr22, Sr44, Sr32 и Sr15; в 141/97w – Sr22 и Sr44. У сорта Донская полукарликовая идентифицированы эффективные к расе Ug99 гены Sr32 и Sr44, а также неэффективные Sr9a, Sr17 и Sr19. Изученные образцы могут быть использованы в качестве доноров генов устойчивости к стеблевой ржавчине в селекционных программах на иммунитет.

The need for new donors of resistance to aggressive race Ug99 of Puccinia graminis Pers. f. sp. tritici Eriks. et Henn has arisen because the pest approaches the territory of Russian Federation. Identification of seventeen known Sr genes was performed with use of molecular markers in six sources of resistance to stem rust race Ug99. They included five common wheat lines and Donskaya Polukarlikovaya cv. The investigated accessions carried genetic material of alien species (Aegilops speltoides, Aе. triuncialis, Secale cereale). We used molecular markers associated with effective genes to race Ug99: Sr2, Sr22, Sr24, Sr25, Sr26, Sr32, Sr35, Sr36, Sr39, Sr40, Sr44, Sr47, and with genes that were ineffective but protected wheat cultivars against local pathogen populations: Sr9a, Sr15, Sr17, Sr19 and Sr31. On the grounds of the analysis of molecular markers the presence of two to seven known Sr genes was postulated in analyzed wheat lines :Sr2, Sr36, Sr39, Sr40, Sr44, Sr47 and Sr15 in line 113/00i-4; Sr22, Sr32, Sr44, Sr9a, Sr17 and Sr19 in line 119/4-06rw; Sr24, Sr36, Sr40, Sr47, Sr15, Sr17 and Sr31 in line GT 96/90; Sr22, Sr44, Sr32 and Sr15 in line 9/00w; Sr22 and Sr44 in line 141/97w. Genes Sr32 and Sr44 effective against Ug99 and ineffective genes Sr9a, Sr17 and Sr19 were identified in Donskaya Polukarlikovaya cv. The accessions studied may be recommended as donors of resistance to race Ug99 in wheat breeding programs.

мягкая пшеницастеблевая ржавчинараса Ug99гены Srмолекулярные маркеры

common wheatstem rustUg99Sr genesmolecular markers

References1

Анисимова А.В., Стеффенсон Б., Митрофанова О.П., Лапочкина И.Ф., Афанасенко О.С. Устойчивость сортимента пшеницы и образцов эгилопса из коллекции ВИР к расе стеблевой ржавчины Ug 99 (TTKSK). Технологии создания и использования сортов и гибридов с групповой и комплексной устойчивостью к вредным организмам в защите растений. СПб., 2010.

Anisimova A.V., Steffenson B., Mitrofanova O.P., Lapochkina I.F., Afanasenko O.S. Ustojchivost sortimenta pshenicy i obrazcov jegilopsa iz kollekcii VIR k rase steblevoj rzhavchiny Ug 99 (TTKSK) [Resistance of wheat and Aegilops accessions from the collection of VIR to stem rust race Ug99 (TTKSK)]. Tehnologii sozdanija i ispolzovanija sortov i gibridov s gruppovoj i kompleksnoj ustojchivostju k vrednym organizmam v zashhite rastenij [In: Technology development and use of varieties and hybrids with the resistance to pathogens and pests in plant protection]. St. Petersburg, 2010.

Волкова Г.В., Шумилов Ю.В., Синяк Е.В., Ваганова О.Ф., Данилова А.В. Эффективные гены устойчивости пшеницы и ячменя к возбудителям ржавчины и их идентификация в перспективных сортообразцах. Биологическая защита растений – основа стабилизации агроэкосистем: Матер. Междунар. науч.-практ. конф. Краснодар, 2014.

Bernardo A.N., Bowden R.L., Rouse M.N., Newcomb M.S., Marshall D.S., Bai G. Validation of molecular markers for new stem rust resistance genes in U.S. Hard winter wheat. Crop Sci. 2013;53: 755-764. DOI:10.2135/cropsci2012.07.0446

Гайнуллин Н.Р., Лапочкина И.Ф., Жемчужина А.И., Киселева М.И., Коломиец Т.М., Коваленко Е.Д. Использование фитопатологического и молекулярно-генетических методов для идентификации генов устойчивости к бурой ржавчине у образцов мягкой пшеницы с чужеродным генетическим материалом коллекции «Арсенал». Генетика. 2007;43(8):1-7.

Crossa J., Burgueсo J., Dreisigacker S., Vargas M., Herrera-Foessel S.A., Lillemo M., Singh R.P., Trethowan R., Warburton M., Franco J., Reynolds M., Crouch J.H., Ortiz R. Association analysis of historical bread wheat germplasm using additive genetic covariance of relatives and population structure. Genetics. 2007;177:1889-1913. DOI: 10.1534/genetics.107.078659

Гультяева Е.И. Наследование устойчивости сортов и линий пшеницы к ржавчинам: Автореф. дис. … канд. биол. наук. СПб.; Пушкин, 1992.

Dorofeev V.F., Udachin R.A., Semenova L.V., Novikova M.V., Gradchaninova O.D., Shitova I.P., Merezhko A.F., Filatenko A.A. Pshenicy mira [World Wheat]. Leningrad: Agropromizdat, 1987.

Дженин С.В., Лапочкина И.Ф., Жемчужина А.И., Коваленко Е.Д. Доноры яровой мягкой пшеницы к бурой ржавчине и мучнистой росе с генетическим материалом видов Aegilops speltoides, Aegilops triuncialis, Triticum kiharae Dorof. et Migusch. Докл. РАСХН. 2009;5:3-7.

Dundas I.S., Anugrahwati D.R., Verlin D.C., Park R.F., Bariana H.S., Mago R., Islam A.K.M.R. New sources of rust resistance from alien species: Meliorating linked defects and discovery. Aust. J. Agric. Res. 2007;58:545-549.

Дорофеев В.Ф., Удачин Р.А., Семенова Л.В., Новикова М.В., Градчанинова О.Д., Шитова И.П., Мережко А.Ф., Филатенко А.А. Пшеницы мира. Л.: Агропромиздат, 1987.

Dzhenin S.V., Lapochkina I.F., Zhemchuzhina A.I., Kovalenko E.D. Donors of spring wheat resistant to the leaf rust with the genetic material of species Aegilops speltoides L., Aegilops triuncialis L., Triticum kiharae Dorof. et Migusch. Doklady RASHN – Russian Agricultural Sciences. 2009;5:3-7.

Коваленко Н.М. Устойчивость видов Triticum L. и Aegilops L. к возбудителю желтой пятнистости листьев пшеницы (Pyrenophora tritici-repentis (Died.) Drechs.): Автореф. дис. … канд. биол. наук. СПб.; Пушкин, 2005.

Faris J.D., Xu S.S., Cai X., Friesen T.L., Jin Y. Molecular and cytogenetic characterization of a durum wheat-Aegilops speltoides chromosome translocation conferring resistance to stem rust. Chromosome Research. 2008;16:1097-1105. DOI: 10.1007/s10577-008-1261-3

Койшыбаев М., Болтыбаева Л.А., Копирова Г.И. Гермоплазма пшеницы с групповой устойчивостью к болезням с воздушно-капельной инфекцией. Агромеридиан. 2008;3(9):34-42.

Gainullin N.R., Lapochkina I.F., Zhemchuzhina A.I., Kiseleva M.I., Kolomiets T.M., Kovalenko E.D. Phytopathological and molecular genetic identification of leaf rust resistance genes in common wheat accessions with alien Genetic material. Genetika (Moscow) – Russian J. Genet. 2007;43(8):875-881.

Кохметова А.М., Атишова М.Н. Идентификация источников устойчивости к стеблевой ржавчине с использованием молекулярных маркеров. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2012;16(1):132-141.

Gultyaeva E.I. Nasledovanie ustojchivosti sortov i linij pshenicy k rzhavchinam. Diss. kand. biol. nauk [Inheritance of resistance of varieties and lines of wheat to rusts. Dr. biol. sci. diss.] St. Petersburg- Pushkin, 1992.

Лапочкина И.Ф. Цитогенетические и морфологические особенности гибридов мягкой пшеницы, полученных с использованием облученной пыльцы вида Aegilops triuncialis L. Генетика. 1998;34(9):1263-1268.

Haile J.K., Hammer K., Badebo A., Singh R.P., Röder M.S. Haplotype analysis of molecular markers linked to stem rust resistance genes in Ethiopian improved durum wheat varieties and tetraploid wheat landraces. Genet. Resour. Crop. Evol. 2013a;60:853-864. DOI: 10.1007/s10722-012-9880-0

Лапочкина И.Ф. Реконструкция генома мягкой пшеницы (Triticum aestivum L.) при отдаленной гибридизации (с использованием Aegilops L. и других видов). Бюл. ВАК. 2000;1:46-47.

Haile J.K., Roder M. Status of genetic research for resistance to Ug99 race of Puccinia graminis f.sp.tritici: A review of current research and implications. African J. Agr. Res. 2013b;8(50):6670-6680. DOI: 10.5897/AJAR2013.7257

Лапочкина И.Ф. Разнообразие коллекции мягкой пшеницы «Арсенал» и его использование в селекционно-генетических исследованиях. Иммуногенетическая защита сельскохозяйственных культур от болезней: теория и практика. Матер. междунар. науч.-практ. конф., посвященной 125-летию со дня рождения Н.И. Вавилова. Большие Вяземы Моск. обл., 2012.

Hayden M.J., Kuchel H., Chalmers K.J. Sequence tagged microsatellites for the Xgwm533 locus provide new diagnostic markers to select for the presence of stem rust resistance gene Sr2 in bread wheat (Triticum aestivum L.). Theor. Appl. Genet. 2004;109:1641-1647. DOI: 10.1007/s00122-004-1787-5

Лапочкина И.Ф., Волкова Г.А. Cоздание коллекций замещенных и дополненных хромосомами Aegilops speltoides Tausch. линий яровой мягкой пшеницы. Генетика. 1994;30:86-87.

Hsam S.L.K., Lapochkina I.F., Zeller F.J. Chromosomal location of genes for resistance to powdery mildew in common wheat (Triticum aestivum L. em. Thell). 8. Gene Pm32 in a wheat-Aegilops speltoides translocation line. Euphytica. 2003;133:367-370.

Лапочкина И.Ф., Гайнуллин Н.Р., Дженин С.В., Руденко М.И., Макарова И.Ю., Иорданская И.В., Кызласов В.Г., Коваленко Е.Д., Жемчужина А.И., Куркова Н.Н. Идентификация генотипа устойчивости к бурой ржавчине у доноров мягкой пшеницы с чужеродным генетическим материалом сородичей для целенаправленного использования в селекции на иммунитет. Матер. конф. «Ориентированные фундаментальные исследования и их реализация в АПК России», СПб., 2008.

Jin Y., Szabo L.J., Pretorius Z.A., Singh R.P., Ward R., Fetch T. Detection of virulence to resistance gene Sr24 within race TTKS of Puccinia graminis f. sp. Tritici. Plant Dis. 2008;92:923-926. DOI: 10.1094/PDIS-92-6-0923

Плахотник В.В. Стеблевая ржавчина на Севере Казахстана и устойчивость к ней образцов коллекции яровой пшеницы ВНИИЗХ. Тр. Всесоюз. совещ. по иммунитету растений. Киев, 1969;3: 72-75.

Синяк Е.В., Волкова Г.В., Надыкта В.Д. Характеристика популяции Puccinia graminis f. sp. tritici по вирулентности в Северо-Кавказском регионе России. Докл. РАСХН. 2013;6:27-30.

Jin Y., Szabo L.J., Rouse M.N., Fetch T., Jr., Pretorius Z.A., Wanyera R., Njau P. Detection of virulence to resistance gene Sr36 within the TTKS race lineage of Puccinia graminis f. sp. Tritici. Plant Dis. 2009;93:367-370. DOI: 10.1094/PDIS-93-4-0367

Шаманин В.П., Моргунов А.И., Манес Я., Зеленский Ю.И., Чурсин А.С., Левшунов М.А., Потоцкая И.В., Лихенко И.Е., Манько Т.А., Каракоз И.И., Табаченко А.В., Петуховский С.Л. Селекционно-генетическая оценка популяций яровой мягкой пшеницы Сибирского питомника челночной селекции СИММИТ. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2012;16(1): 21-32.

Kohmetova A.M., Atishova M.N. Identification of sources of resistance to wheat stem rust using molecular markers. Vavilovskii zhurnal genetiki i selektsii – Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2012;16(1):132-141.

Koishybayev M., Boltybaeva L.A., Copying G.I. Wheat germplasm with resistance to disease group with airborn infection. Agromeridian – Agromeridian. 2008;(3)(9):34-42.

Kovalenko N.M. Ustojchivost vidov Triticum L. i Aegilops L. k vozbuditelju zheltoj pjatnistosti list’ev pshenicy (Pyrenophora triticirepentis (Died.) Drechs.). Diss. kand. biol. nauk [Resistance of Triticum L. and Aegilops L. species to wheat tan spot (Pyrenophora tritici- repentis (Died.) Drechs.). Dr. biol. sci. diss.] St. Petersburg- Pushkin, 2005.

Lapochkina I.F. Cytogenetic and morphological features of Common Wheat Hybrids Obtained with the Use of Irradiated Pollen of Aegilops triuncialis L. Genetika (Moscow) – Russian J. Genet.1998;34(9):1064-1068.

Lapochkina I.F. Reconstruction of bread wheat genome (Triticum aestivum L.) under hybridization (using Aegilops L. and other species). Byulleten VAK – Bulletin of Higher Attestation Commission. 2000;1:46-47.

Lapochkina I.F., Iordanskaya I.V., Yatchevskaya G.L., Zemchuzina А.I., Kovalenko Е.D., Solomatin D.А., Kolomiets T.М. Identification of alien genetic material and genes of resistance to leaf rust in wheat (Triticum aestivum L.) stocks. Proc. of Tenth Int. Wheat Genetics Symp. 2003;3:1190-1192.

Lapochkina I.F. Diversity of common wheat in the «Arsenal» collection and its use in selection and genetic research. Mat. mezhdunarodnoj nauchno-prakticheskoj konf., posvjashhennoj 125-letiju so dnja rozhdenija N.I. Vavilova. [Immunogenetic control of plant diseases in agriculture: theory and practice. Abstr. of the International Scientific-Practical Conference devoted to the 125-year anniversary of N.I. Vavilov’s birth]. Bolshie Vyazemy, Moscow Region, 2012.

Mago R., Bariana H.S., Dundas I.S., Spielmeyer W., Lawrence G.J., Pryor A.J., Ellis J.G. Development of PCR markers for the selection on wheat stem rust resistance genes Sr24 and Sr26 in diverse wheat germplasm. Theor. Appl. Genet. 2005;111:496-504. DOI: 10.1007/

s00122-005-2039-z

Lapochkina I.F., Gainullin N.R., Dzhenin S.V., Rudenko M.I., Iordanskaya I.V., Kyzlasov V.G., Kovaltnko E.D., Zhemchuzhina A.I., Kurkova N.N. Identification of genotype resistance to leaf rust in wheat donors with alien genetic material of relatives for the strategic use in breeding for immunity. Mat. Konf. “Orientirovannye fundamental’nye issledovanija i ih realizacija v APK Rossii”. [Abstr. of the conference “Oriented basic research and implementation in the agricultural sector of Russia”]. St. Petersburg, 2008.

McIntosh R.A., Wellings C.R., Park R.F. Wheat rusts: An atlas of resistance genes. Commonwealth Scientific and Industrial Research Organization, Clayton, South Victoria, Australia, 1995.

McNeil M.D., Kota R., Paux E., Dunn D., McLean R., Feuillet C., Li D., Kong X., Lagudah E., Zhang J.C., Jia J.Z., Spielmeyer W., Bellgard M., Appels R. BAC-derived markers for assaying the stem rust resistance gene, Sr2, in wheat breeding programs. Mol. Breeding. 2008;22:15-24. DOI: 10.1007/s11032-007-9152-4

Murray M.G., Thompson W.F. Rapid isolation of high molecular weight plant DNA. Nucl. Acids. Res. 1980;8(19)19:4321-4326.

Olson E.L., Brown-Guedira G., Marshall D., Stack E., Bowden R.L., Jin Y., Rouse M., Pumphrey M.O. Development of wheat lines having a small introgressed segment carrying stem rust resistance gene Sr22. Crop Sci. 2010;50:1823-1830. DOI: 10.2135/cropsci2009. 11.0652

Lapochkina I.F, Volkova G.A. Development of collection of spring common wheat lines substituted and supplemented by chromosomes Aegilops speltoides Tausch. Genetika (Moscow) – Genetics (Moscow). 1994;30:86-87.

Peterson R.F., Campbell A.B., Hannah A.E. A diagrammatic scale for estimating rust intensity on leaves and stems of cereals. Can. J. Res. Sec. C Bot. Sci. 1948;26:297-311.

Rahmatov M., Andrsson S., Gustavsson L., Wanyera R., Steffenson B., Johansson E. Analysis of adult plant and seedling stem rust resistance in wheat-alien introgression lines. Disease Risk and Food Security: Proc. of the 13th Int. Cereal Rusts and Powdery Mildew Conf. 28 Aug.–1 Sept. 2012, Beijing. 2012.

Singh R.P., Hodson D.P., Jin Y., Huerta-Espino J., Kinyua M.G., Wanyera R., Njau P., Ward R.W. Current status, likely migration and strategies to mitigate the threat to wheat production from race Ug99 (TTKS) of stem rust pathogen. CAB Reviews: Perspectives in Agriculture, Veterinary Science, Nutrition and Natural Resources. 2006;1(054). DOI: 10.1079/PAVSNNR20061054

Singh R.P., Hodson D.P., Huerta-Espino J., Jin Y., Njau P., Wanyera R., Herrera-Foessel S.A., Ward R.W. Will stem rust destroy the world’s wheat crop? Advanced Agronomy. 2008;98:271-309. DOI: 10.1016/S0065-2113(08)00

McIntosh R.A., Wellings C.R., Park R.F. Wheat rusts: An atlas of resistance genes. Commonwealth Scientific and Industrial Research Organization, Clayton, South Victoria, Australia, 1995.

Stakman E.C., Stewart D.M., Loegering W.Q. Identification of physiologic races of Puccinia graminis var. tritici. U.S. Dep. Agric. Agric. Res. Serv. E-617. U.S. Gov. Print. Office, Washington, DC, 1962.

McIntosh R.A., Wellings C.R., Park R.F. Wheat rusts: An atlas of resistance genes. Commonwealth Scientific and Industrial Research Organization, Clayton, South Victoria, Australia, 1995.

Tsilo T.J., Jin Y., Anderson J.A. Diagnostic microsatellite markers for detection of stem rustresistance gene Sr36 in diverse genetic backgrounds of wheat. Crop Sci. 2008;48:253-261. DOI: 10.2135/cropsci2007.04.0204

McNeil M.D., Kota R., Paux E., Dunn D., McLean R., Feuillet C., Li D., Kong X., Lagudah E., Zhang J.C., Jia J.Z., Spielmeyer W., Bellgard M., Appels R. BAC-derived markers for assaying the stem rust resistance gene, Sr2, in wheat breeding programs.Mol. Breeding. 2008;22:15-24. DOI: 10.1007/s11032-007-9152-4

William H.M., Trethowan R., Crosby-Galvan E.M. Wheat breeding assisted by markers: CIMMYT’s experience. Euphytica. 2007;157: 307-319. DOI: 10.1007/s10681-007-9405-7

McNeil M.D., Kota R., Paux E., Dunn D., McLean R., Feuillet C., Li D., Kong X., Lagudah E., Zhang J.C., Jia J.Z., Spielmeyer W., Bellgard M., Appels R. BAC-derived markers for assaying the stem rust resistance gene, Sr2, in wheat breeding programs.Mol. Breeding. 2008;22:15-24. DOI: 10.1007/s11032-007-9152-4

Wu S., Pumphrey M., Bai G. Molecular mapping of stem-rust-resistance gene Sr40 in wheat. Crop Sci. 2009;49:1681-1686. DOI: 10.2135/cropsci2008.11.0666

Murray M.G., Thompson W.F. Rapid isolation of high molecular weight plant DNA. Nucl. Acids. Res. 1980;8(19)19:4321-4326.

Xu S.S., Klindworth D., Niu Z.-X., Zhang Q.-J., Chao S.-M., Friesen T., Jin Y., Zhong S.-B., Faris J., Cai X.-W., Larkin P. Introgression of alien genes for resistance to Ug99 stem rust in wheat. Disease Risk and Food Security: Proc. 13th Int. Cereal Rusts and Powdery Mildew Conf. 28 Aug.–1 Sept. 2012, Beijing. 2012.

Murray M.G., Thompson W.F. Rapid isolation of high molecular weight plant DNA. Nucl. Acids. Res. 1980;8(19)19:4321-4326.

Yu L.X., Liu S., Anderson J.A., Singh R.P., Jin Y., Dubcovsky J., Brown-Guidera G., Bhavani S., Morgounov A., He Z., Huerta-Espino J., Sorrells M.E. Haplotype diversity of stem rust resistance loci in uncharacterized wheat lines. Mol. Breeding. 2010;26:667-680. DOI: 10.1007/s11032-010-9403-7

Zheng Q., Klindworth D., Niu Z.-X., Rouse M., Yu J., Friesen T., Li Z.-Z., Xu S. Stem rust resistance in Thinopyrum species. Disease Risk and Food Security. Proc. 13th Int. Cereal Rusts and Powdery Mildew Conf. 28 Aug.–1 Sept. 2012, Beijing. 2012.

Peterson R.F., Campbell A.B., Hannah A.E. A diagrammatic scale for estimating rust intensity on leaves and stems of cereals. Can. J. Res. Sec. C Bot. Sci. 1948;26:297-311.

Plakhotnik V.V. Stem rust in northern Kazakhstan and resistance to her collection of accessions of spring wheat VNIIZH Tret’e. Vsesojuz. soveshh. po immunitetu rastenij. [Third All-Soviet Union meeting of plant immunity]. Kiev, 1969;3:72-75.

Shamanin V.P., Morgunov A.I., Manes J., Zelensky Y.I., Chursin, A.S., Levshunov M.A., Pototskaya. I.V., Likhenko I.E., Manko T.A., Karakoz I.I., Tabachenko A.V., Petukhovsky S.L. Breeding and genetic estimation of spring bread wheat populations of the Siberian shuttle breeding nursery of CIMMYT. Vavilovskii zhurnal genetiki i selektsii – Vavilov Journal of Genetics and Breeding.2012;16(1): 21-32.

Sinyak E.V., Volkova G.V., Nadykta V.D. Characteristics of the population Puccinia graminis f. sp. tritici virulence in the North Caucasus region of Russia. Doklady RASHN – Russian Agricultural Sciences. 2013;6:27-30.

Volkova G.V., Shumilov Y.V., Sinyak E.V., Vaganova O.F., Danilova A. V. Effective resistance genes of wheat and barley to rust pathogens and their identification in promising cultivar accessions. Mat. Mezhdunar. nauch.-prak. konferencii “Biologicheskaja zashhita rastenij – osnova stabilizacii agrojekosistem” [Abstr. of the International Scientific-Practical Conference “Biological plant protection as the basis of ecosystem stabilization”]. Krasnodar, 2014.

William H.M., Trethowan R., Crosby-Galvan E.M. Wheat breeding assisted by markers: CIMMYT’s experience. Euphytica. 2007;157: 307-319. DOI: 10.1007/s10681-007-9405-7

Wu S., Pumphrey M., Bai G. Molecular mapping of stem-rust-resistance gene Sr40 in wheat. Crop Sci. 2009;49:1681-1686. DOI: 10.2135/cropsci2008.11.0666

The authors declare that there are no conflicts of interest present.