References

vavilov

Вавиловский журнал генетики и селекции

Vavilov Journal of Genetics and Breeding

2500-3259

Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the RAS

10.18699/VJ16.143

vavilov-580

Research Article

Наследственные особенности физиологических функций

Hereditary features of physiological functions

Экспериментальный описторхоз: исследование состава форменных элементов крови, гемопоэза и стартл-рефлекса у лабораторных животных

Experimental opisthorchiasis: a study of blood cells, hematopoiesis and startle reflex in laboratory animals

Августинович

Д. Ф.

Avgustinovich

D. F.

avgust@bionet.nsc.ru

Орловская

И. А.

Orlovskaya

I. A.

Топоркова

Л. Б.

Toporkova

L. B.

Вишнивецкая

Г. Б.

Vishnivetskaya

G. B.

Катохин

А. В.

Katokhin

A. V.

Львова

М. Н.

Lvova

M. N.

Кашина

Е. В.

Kashina

E. V.

Бондарь

Н. П.

Bondar

N. P.

Феофанова

Н. А.

Feofanova

N. A.

Мордвинов

В. А.

Mordvinov

V. A.

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Научно-исследовательский институт фундаментальной и клинической иммунологии», Новосибирск, РоссияРоссияScientific Research Institute of Fundamental and Clinical Immunology, Novosibirsk, RussiaRussian Federation

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук», Новосибирск, Россия Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Научно-исследовательский институт фундаментальной и клинической иммунологии», Новосибирск, РоссияРоссияInstitute of Cytology and Genetics SB RAS, Novosibirsk, Russia Scientific Research Institute of Fundamental and Clinical Immunology, Novosibirsk, RussiaRussian Federation

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук», Новосибирск, Россия Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Научно-исследовательский институт молекулярной биологии и биофизики», Новосибирск, РоссияРоссияInstitute of Cytology and Genetics SB RAS, Novosibirsk, Russia Scientific Research Institute of Molecular Biology and Biophysics, Novosibirsk, RussiaRussian Federation

2016

17052016

202155164

2016

Августинович Д.Ф., Орловская И.А., Топоркова Л.Б., Вишнивецкая Г.Б., Катохин А.В., Львова М.Н., Кашина Е.В., Бондарь Н.П., Феофанова Н.А., Мордвинов В.А.

Avgustinovich D.F., Orlovskaya I.A., Toporkova L.B., Vishnivetskaya G.B., Katokhin A.V., Lvova M.N., Kashina E.V., Bondar N.P., Feofanova N.A., Mordvinov V.A.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/580

Один из видов семейства Opisthorchiidae – Opisthorchis felineus (O. felineus) – вызывает тяжелые нарушения в организме человека и животных, поэтому является объектом актуальных научных исследований. В работе проведено сравнительное исследование влияния инвазии O. felineus на изменение в составе форменных элементов крови, костномозгового гемопоэза и поведенческого рефлекса вздрагивания у мышей C57BL/6 и сирийских хомячков через две недели после инфицирования. Обнаружены существенные межвидовые различия по многим показателям. Было установлено, что относительная масса основного органа периферической иммунной системы – селезенки – у мышей существенно больше, чем у хомячков. Более того, инвазия O. felineus вызывала гипертрофию селезенки только у мышей. У хомячков были более выраженные отклонения от нормы в составе форменных элементов крови, которые сопровождались активацией миело- и эритропоэза. У мышей установленные изменения в крови не сопровождались сдвигами колониеобразующей активности костного мозга. Мыши отличались от хомячков и по реакции вздрагивания на акустический сигнал как по выраженности самой реакции, так и по величине преимпульсного ингибирования. У инфицированных хомячков не было реакции привыкания на звуковой сигнал. Кроме того, у хомячков созревание марит O. felineus происходило раньше, чем у мышей. Полученные данные говорят о бόльшей резистентности мышей к инфицированию O. felineus, однако не исключают возможности использования мышей в качестве модельных при исследовании процессов, происходящих в организме хозяина на фоне экспериментального описторхоза.

One of the species of the family Opisthorchiidae, Opisthorchis felineus (O. felineus), causes severe disturbances in humans and animals, and so it is the subject of important research studies. Two weeks after infection we compared the impact of O. felineus invasion on the changes in blood cells composition, bone marrow hematopoiesis and behavioral startlereflex in inbred C57BL/6 male mice and Syrian hamsters (Mesocricetus auratus). Considerable interspecies differences were revealed for many parameters estimated. It was found that the relative weight of the main organ of the peripheral immune system – spleen, is significantly larger in mice than in hamsters. Moreover, the infection with O. felineus caused a significant enlargement of the spleen only in mice. More pronounced changes in the blood cells composition, which was accompanied by activation of hematopoietic stem cells of myeloid and erythroid set, were determined in hamsters. Blood changes in the response to infection in mice were less severe and were not accompanied by the changes in colony formation. Mouse acoustic startle reaction differed from hamster one too. The expression of the startle reaction and the value of pre-pulse inhibition were discriminated in animals of two species. Infected hamsters had no reaction of habituation to the sound stimulus. In addition, the maturation of O. felineus worms was faster in hamsters than in mice. Data obtained suggest a greater resistance of mice to O. felineus infection, but do not exclude the availability of mice as a model in the study of processes taking place in the host during the development of experimental opisthorchiasis.

O. felineusострый описторхозхомячкимышиформенные элементы кровикрасный костный мозггемопоэзстартл-рефлекс.

O. felineusacute opisthorchiasishamstersmiceblood cellsred bone marrowhemopoiesisstartle-reflex.

References1

Ахмедов В.А., Критевич М.А. Хронический описторхоз как полиорганная патология. Вестник НГУ. Сер. Биология, клиническая медицина. 2009;7(1):118-121.

Adams A.M. Foodborne Trematodes. Foodborne Parasites. Ed. Y.R. Ortega. N.Y: Springer Science + Business Media, LLC, 2006. Chap.7: 161-196.

Бакштановская И.В., Степанова Т.Ф. Анализ комплекса биохимических показателей функций печени при хроническом описторхозе. Мед. паразитол. и паразитар. болезни. 2005;4:18-21.

Akhmedov V.A., Kritevich M.A. Chronic opisthorchiasis is a multipleorgan pathology. Vestnik Novosibirskogo Gosudarstvennogo Universiteta. Seriya Biologiya, Clinicheskaya Medicina = Herald of Novosibirsk State University. Biology, Clinical Medicine. 2009;7(1): 118-121.

Бражникова Н.А., Толкаева М.В. Особенности клиники, диагностики и лечения описторхозных абсцессов печени. Анналы хирург. гепатологии. 2000;5(1):37-42.

Bakshtanovskaia I.V., Stepanova T.F. An analysis of complex of biochemical parameters of liver functions in chronic opisthorchiasis. Meditsinskaya Parazitologiya i Parazitarnye Bolezni = Medical Parasitology and Parasitic Diseases. 2005;4:18-21.

Бражникова Н.А., Толкаева М.В. Рак печени, желчных путей и поджелудочной железы при хроническом описторхозе. Бюл. сиб. медицины. 2002;2:71–76.

Boonmars T., Boonjaraspinyo S., Kaewsamut B. Animal models for Opisthorchis viverrini infection. Parasitol. Res. 2009;104:701-703.

Бронштейн А.М., Лучшев В.И. Трематодозы печени: описторхоз, клонорхоз. Рус. мед. журнал. 1998;6(3):140-148.

Braff D.L., Geyer M.A., Swerdlow N.R. Human studies of prepulse inhibition of startle: normal subjects, patient groups, and pharmacological studies Psychopharmacology. 2001;156:234–258.

Бычков В.Г., Крылов Г.Г., Сабиров А.Х., Зуевский В.П., Хадиева Е.Д., Жандеков А.К. Динамика клеточных преобразований в печени при экспериментальном описторхозе. Мед. паразитол. и паразитар. болезни. 2008;3:9-12.

Brazhnikova N.A., Tolkaeva M.V. Peculiarities of clinic, diagnostics and treatment of the opisthorchiasis liver abscesses. Annaly Khirurgicheskoy Gepatologii = Annals of Surgical Hepatology. 2000;5(1): 37-42.

Зеленцов А.Г. Восприимчивость линейных мышей к гельминтам. II. Развитие Opistorchis felineus у мышей линий А/Не, CBA/Lac, CC57M/Mv, C57B1/6J, DBA/2J, SWR. J. Мед. паразитол. и паразитар. болезни. 1974;43(1):95-98.

Brazhnikova N.A., Tolkaeva M.V. Cancer of the liver, biliary tract and pancreas in chronic opisthorchiasis. Byulleten Sibirskoy Meditsiny = Bulletin of Siberian Medicine. 2002;2:71–76.

Кишкун А.А. Клиническая лабораторная диагностика. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2013.

Bronstein А.M., Luchshev V.I. Trematode infections of the liver: opisthorchiasis and clonorchiasis. Russkiy Meditsinskiy Zhurnal = Russian Medical Journal. 1998;6(3):140-148.

Козлов В.А., Журавкин И.Н., Цырлова И.Г. Стволовая кроветворная клетка и иммунный ответ. Новосибирск: Наука, 1982.

Bychkov V.G., Krylov G.G., Sabirov A.Kh., Zuyevsky V.P., Khadiyeva Ye.D., Zhandekov Ye.D. Hepatic cell transformation changes in experimental opisthorchiasis. Meditsinskaya Parazitologiya i Parazitarnye Bolezni = Medical Parasitology and Parasitic Diseases. 2008;3:9-12.

Литвинова Л.С., Колобовникова Ю.В., Кнутарева Е.Н., Григорьева Е.С., Суворова Е.В., Новицкий В.В., Рязанцева Н.В. Цитотоксический потенциал эозинофильных гранулоцитов у больных с синдромом эозинофилии. Бюл. сиб. медицины. 2006;3:26-31.

Choi Y.K., Yoon B.I., Won Y.S., Lee C.H., Hyun B.H., Kim H.C., Oh G.T., Kim D.Y. Cytokine responses in mice infected with Clonorchis sinensis. Parasitol. Res. 2003;91(2):87-93.

Львова М.Н., Дужак Т.Г., Центалович Ю.П., Катохин А.В., Мордвинов В.А. Секретом мариты печеночного сосальщика Opisthorchis felineus. Паразитология. 2014;48(3):169-184.

D’Mello C., Swain M.G. Liver-brain inflammation axis. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2011;301(5):G749-G61.

Максимова Г.А., Жукова Н.А., Кашина Е.В., Львова М.Н., Катохин А.В., Толстикова Т.Г., Огородова Л.М., Каминский И.П., Сазонов А.Э., Мордвинов В.А. Экспериментальная модель описторхоза на хомяках (Mesocricetus auratus). Бюл. сиб. медицины. 2012;6:59-65.

Garrick T., Morrow N., Shalev A.Y., Eth S. Stress-induced enhancement of auditory startle: an animal model of posttraumatic stress disorder. Psychiatry. 2001;64:346- 354.

Начева Л.В., Литягина А.В. Клеточные реакции при гельминтозах. Рос. паразитол. журнал. 2012;3:80-86.

Geyer M.A., Braff D.L. Startle habituation and sensorimotor gating in schizophrenia and related animal models. Schizophrenia Bull. 1987;13(4):643-668.

Новицкий В.В., Рязанцева Н.В., Литвинова Л.С., Ткаченко С.Б., Колобовникова Ю.В., Лепехин А.В., Чернышова Н.П., Григорьева Е.С., Суворова Е.В., Зима А.П. Изменения продукции ключевых цитокинов – регуляторов эозинофильных гранулоцитов – при описторхозной инвазии. Клин. лаб. диагностика. 2008; 2:38-42.

Graham F. The more or less startling effects of weak prestimuli. Psychophysiology. 1975;12:238–248.

Прокопенко В.Д., Волина Е.Г. Структура и функции иммунной системы человека. М.: РУДН, 2001.

Hoffman H.S., Searle J.L. Acoustic and temporal factors in the evocation of startle. J. Acoust. Soc. Am. 1968;43:269–282.

Степанова Т.Ф., Бакштановская И.В., Скичко С.И. Показатели тиреоидного статуса у больных острым и суперинвазионным описторхозом. Фунд. исследования. 2004;6:103-104.

Hung N.M., Madsen H., Fried B. Global status of fish-borne zoonotic trematodiasis in humans. Acta Parasitol. 2013;58(3):231-258.

Степанова Т.Ф., Подклетнова Л.Ф. Паразитоценотические аспекты инвазионно-инфекционной патологии (описторхоз и туберкулез). Тюмень: ТГУ, 2002.

Jittimanee J., Sermswan R.W., Puapairoj A., Maleewong W., Wongratanacheewin S. Cytokine expression in hamsters experimentally infected with Opisthorchis viverrini. Parasite Immunol. 2007;29(3): 159-167.

Adams A.M. Foodborne Trematodes. Foodborne Parasites. Ed. Y.R. Or-tega. N.Y: Springer Science + Business Media, LLC, 2006. Chap.7: 161-196.

Keiser J., Utzinger J. Food-borne trematodiasis: current chemotherapy and advances with artemisinins and synthetic trioxolanes. Trends Parasitol. 2007;23(11):555-562.

Boonmars T., Boonjaraspinyo S., Kaewsamut B. Animal models for Opisthorchis viverrini infection. Parasitol. Res. 2009;104:701-703.

King K.Y., Goodell M.A. Inflammatory modulation of HSCs: viewing the HSC as a foundation for the immune response. Nature. 2011;11:685-692.

Braff D.L., Geyer M.A., Swerdlow N.R. Human studies of prepulse inhibition of startle: normal subjects, patient groups, and pharmacological studies Psychopharmacology. 2001;156:234–258.

Kishkun A.A. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. Uchebnoe posobie [Clinical Laboratory Diagnostics. Textbook]. Moscow, GEOTAR- Media Publ., 2013.

Choi Y.K., Yoon B.I., Won Y.S., Lee C.H., Hyun B.H., Kim H.C., Oh G.T., Kim D.Y. Cytokine responses in mice infected with Clonorchis sinensis. Parasitol. Res. 2003;91(2):87-93.

Kozlov V.A., Zhuravkin I.N., Tsyrlova I.G. Stvolovaya krovetvornaya kletka i immunnyy otvet [Hematopoietic Stem Cell and Immune Response]. Novosibirsk, Nauka, 1982.

D’Mello C., Swain M.G. Liver-brain inflammation axis. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2011;301(5):G749-G61.

Labome.com. Laboratory Mice and Rats. Mat. Methods 2012;2:113. http://www.labome.com/method/Laboratory-Mice-and-Rats.html

Garrick T., Morrow N., Shalev A.Y., Eth S. Stress-induced enhancement of auditory startle: an animal model of posttraumatic stress disorder. Psychiatry. 2001;64:346-354.

Litvinova L.S., Kolobovnikova Yu.V., Knoutareva E.N., Grigoryeva E.S., Souvorova E.V., Novitsky V.V., Ryazantseva N.V. Cytotoxic potential of eosinophiles’ granulocytes in patients having eosinophilia syndrome. Byulleten Sibirskoy Meditsiny = Bulletin of Siberian Medicine. 2006;3:26-31.

Geyer M.A., Braff D.L. Startle habituation and sensorimotor gating in schizophrenia and related animal models. Schizophrenia Bull. 1987;13(4):643-668.

Lvova M.N., Duzhak T.G., Tsentalovich Yu.P., Katokhin A.V., Mordvinov V.A. Secretome of the adult liver fluke Opisthorchis felineus. Parazitologiya = Parasitology (St.-Petersburg). 2014;48(3):169-184.

Graham F. The more or less startling effects of weak prestimuli. Psychophysiology. 1975;12:238–248.

Lvova M.N., Tangkawattana S., Balthaisong S., Katokhin A.V., Mordvinov V.A., Sripa B. Comparative histopathology of Opisthorchis felineus and Opisthorchis viverrini in a hamster model: an implication of high pathogenicity of the European liver fluke. Parasitol. Int. 2012;61(1):167-172.

Hoffman H.S., Searle J.L. Acoustic and temporal factors in the evocation of startle. J. Acoust. Soc. Am. 1968;43:269–282.

Lvova M.N., Zhukova M.V., Kiseleva E.V., Mayboroda O.A., Hensbergen P., Kizilova E.A., Besprozvannykh V.V., Sripa B., Katokhin A.V., Mordvinov V.A. Hemozoin in the gut contents of liver flukes (Opisthorchiidae family). Int. J. Parasitol. 2016;46:147-156. DOI http://dx.doi.org/10.1016/j.ijpara.2015.12.003.

Hung N.M., Madsen H., Fried B. Global status of fish-borne zoonotic trematodiasis in humans. Acta Parasitol. 2013;58(3):231-258.

Maksimova G.A., Zhukova N.A., Kashina E.V., Lvova M.N., Katokhin A.V., Tolstikova T.G., Ogorodova L.M., Kaminsky I.P., Sazonov A.E., Mordvinov V.A. Experimental model of opisthorchiasis in hamsters (Mesocricetus auratus). Byulleten Sibirskoy Meditsiny = Bulletin of Siberian Medicine. 2012;6:59-65.

Maltby S., Hansbro N.G., Tay H.L., Stewart J., Plank M., Donges B., Rosenberg H.F., Foster P.S. Production and differentiation of myeloid cells driven by proinflammatory cytokines in response to acute pneumovirus infection in mice. J. Immunol. 2014;193(8):4072-4082.

Keiser J., Utzinger J. Food-borne trematodiasis: current chemotherapy and advances with artemisinins and synthetic trioxolanes. Trends Parasitol. 2007;23(11):555-562.

Mairiang E., Laha T., Bethony J.M., Thinkhamrop B., Kaewkes S., Sithithaworn P., Tesana S., Loukas A., Brindley P.J., Sripa B. Ultrasonography assessment of hepatobiliary abnormalities in 3359 subjects with Opisthorchis viverrini infection in endemic areas of Thailand. Parasitol. Int. 2012;61(1):208-211.

King K.Y., Goodell M.A. Inflammatory modulation of HSCs: viewing the HSC as a foundation for the immune response. Nature. 2011;11:685-692.

Marshall R.D., Garakani A. Psychobiology of the acute stress response and its relationship to the psychobiology of post-traumatic stress disorder. Psychiat. Clin. N. Am. 2002;25(2):385-395.

Labome.com. Laboratory Mice and Rats. Mat. Methods 2012;2:113. http://www.labome.com/method/Laboratory-Mice-and-Rats.html

Megías J., Yáñez A., Moriano S., O’Connor J.E., Gozalbo D., Gil M.L. Direct Toll- like receptor-mediated stimulation of hematopoietic stem and progenitor cells occurs in vivo and promotes differentiation toward macrophages. Stem Cells. 2012;30(7):1486-1495.

Mordvinov V.A., Furman D.P. The Digenea parasite Opisthorchis felineus: a target for the discovery and development of novel drugs. Infect. Disord. Drug Targets. 2010;10(5):385-401.

Mordvinov V.A., Yurlova N.I., Ogorodova L.M., Katokhin A.V. Opisthorchis felineus and Metorchis bilis are the main agents of liver fluke infection of humans in Russia. Parasitol. Int. 2012;61(1):25-31.

Nacheva L.V., Lityagina A.V. Cellular reactions in helminthiasis. Rossiyskiy parazitologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Parasitology. 2012;3:80-86.

Novitsky V.V., Ryazantseva N.V., Litvinova L.S., Tkachenko S.B., Kolobovnikova Yu.V., Lepekhin A.V., Chernyshova N.P., Grigoryeva E.S., Suvorova E.V., Zima A.P. Change in the production of key cytokines for regulation eosinophilic granulocytes in Opisthorchis felineus invasion. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika = Russian Clinical Laboratory Diagnostics. 2008;2:38-42.

Marshall R.D., Garakani A. Psychobiology of the acute stress response and its relationship to the psychobiology of post-traumatic stress disorder. Psychiat. Clin. N. Am. 2002;25(2):385-395.

Ogorodova L.M., Freidin M.B., Sazonov A.E., Fedorova O.S., Gerbek I.E., Cherevko N.A., Lebedeva N.Y. A pilot screening of prevalence of atopic states and opisthorchosis and their relationship in people of Tomsk Oblast. Parasitol. Res. 2007;101(4):1165-1168.

Megías J., Yáñez A., Moriano S., O’Connor J.E., Gozalbo D., Gil M.L. Direct Toll-like receptor-mediated stimulation of hematopoietic stem and progenitor cells occurs in vivo and promotes differentiation toward macrophages. Stem Cells. 2012;30(7):1486-1495.

Paylor R., Crawley J.N. Inbred strain differences in prepulse inhibition of the mouse startle response. Psychopharmacology. 1997;132: 169-180.

Mordvinov V.A., Furman D.P. The Digenea parasite Opisthorchis felineus: a target for the discovery and development of novel drugs. Infect. Disord. Drug Targets. 2010;10(5):385-401.

Pozio E., Armignacco O., Ferri F., Gomez Morales M.A. Opisthorchis felineus, an emerging infection in Italy and its implication for the European Union. Acta Trop. 2013;126(1):54-62.

Prokopenko V.D., Volina E.G. Struktura i funktsii immunnoy sistemy cheloveka [Structure and function of the human immune system.]. Moscow, RUDN, 2001.

Schuster R., Dell K., Nöckler K., Vöster J., Schwartz-Porsche D., Haider W. Liver enzyme activity and histological changes in the liver of silver foxes (Vulpes vulpes fulva) experimentally infected with opisthorchiid liver flukes. A contribution to the pathogenesis of opisthorchiidosis. Parasitol. Res. 2003;89(5):414-418.

Paylor R., Crawley J.N. Inbred strain differences in prepulse inhibition of the mouse startle response. Psychopharmacology. 1997;132: 169-180.

Sripa B., Bethony J.M., Sithithaworn P., Kaewkes S., Mairiang E., Loukas A., Mulvenna J., Laha T., Hotez P.J., Brindley P.J. Opisthorchiasis and Opisthorchis- associated cholangiocarcinoma in Thailand and Laos. Acta Trop. 2011;120(Suppl. 1):S158-S168.

Pozio E., Armignacco O., Ferri F., Gomez Morales M.A. Opisthorchis felineus, an emerging infection in Italy and its implication for the European Union. Acta Trop. 2013;126(1):54-62.

Sripa B., Kaewkes S. Relationship between parasite-specific antibody responses and intensity of Opisthorchis viverrini infection in hamsters. Parasite Immunol. 2000;22(3):139-145.

Sripa B., Kaewkes S., Sithithaworn P., Mairiang E., Laha T., Smout M., Pairojkul C., Bhudhisawasdi V., Tesana S., Thinkamrop B., Bethony J.M., Loukas A., Brindley P.J. Liver fluke induces cholangiocarcinoma. PLoS Med. 2007;4(7):e201:1148-1155.

Sripa B., Bethony J.M., Sithithaworn P., Kaewkes S., Mairiang E., Loukas A., Mulvenna J., Laha T., Hotez P.J., Brindley P.J. Opisthorchiasis and Opisthorchis-associated cholangiocarcinoma in Thailand and Laos. Acta Trop. 2011;120(Suppl. 1):S158-S168.

Sripa B., Thinkhamrop B., Mairiang E., Laha T., Kaewkes S., Sithithaworn P., Periago M.V., Bhudhisawasdi V., Yonglitthipagon P., Mulvenna J., Brindley P.J., Loukas A., Bethony J.M. Elevated plasma IL-6 associates with increased risk of advanced fibrosis and cholangiocarcinoma in individuals infected by Opisthorchis viverrini. PLoS Negl. Trop. Dis. 2012;6(5):e1654:1-9.

Sripa B., Kaewkes S. Relationship between parasite-specific antibody responses and intensity of Opisthorchis viverrini infection in hamsters. Parasite Immunol. 2000;22(3):139-145.

Stepanova T.F., Bakshtanovskaia I.V., Skichko S.I. Parameters of thyroid status in patients with acute and superinvasion opisthorchiasis. Fundamentalnye issledovaniya = Fundamental research. 2004;6: 103-104.

Stepanova T.F., Podkletnova L.F. Parazitotsenoticheskie aspekty invazionno-infektsionnoy patologii (opistorkhoz i tuberkulez) [Parasitecoenotic aspects of invasive- infected patology (opisthorchiasis and tuberculosis)]. Tyumen: TGU, 2002.

Yongvanit P., Thanan R., Pinlaor S., Sithithaworn P., Loilome W., Namwat N., Techasen A., Dechakhamphu S. Increased expression of TLR-2, COX-2, and SOD-2 genes in the peripheral blood leukocytes of opisthorchiasis patients induced by Opisthorchis viverrini antigen. Parasitol. Res. 2012;110(5):1969-1977.

Zelentosov A.G. Susceptibility of inbred mice to helminths. II. Development of Opisthorchis felineus in mice of strains A/He, CBA/Lac, CC57w/MJ, C57BL/LJ, DBA/2J and SWR. J. Meditsinskaya Parazitologiya i Parazitarnye Bolezni = Medical Parasitology and Parasitic Diseases. 1974;43(1):95-98.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.