ОСНОВНЫЕ ПРИЧИНЫ НИЗКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ПОЛУЧЕНИЯ АЛЮМОУСТОЙЧИВЫХ РЕГЕНЕРАНТОВ ЗЕРНОВЫХ КУЛЬТУР

Алюмоустойчивость, проявляющаяся на клеточном уровне, открывает возможность получения устойчивых форм растений методом культуры ткани. На практике, однако, данный подход не нашел пока широкого применения, что чаще всего связывают с трудностями регенерации растений из каллусной культуры. Предлагаемая статья заостряет внимание читателей на иных причинах низкой эффективности данных подходов. Среди них –высокая внутрисортовая гетерогенность зерновых культур по признаку алюмоустойчивости; условность принятого на практике разделения генотипов на устойчивые и неустойчивые; получение кислото- и алюмоустойчивых регенерантов не только в стрессовых, но и в контрольных условиях без какого-либо действия изучаемого стрессора; недостатки методических подходов, связанные со специфичностью поведения алюминия в различных средах, когда неправильно подобранные состав или рН среды приводят к маскированию действия алюминия. В результате совместного действия всех упомянутых в статье причин предлагаемые методики создания высокоустойчивых регенерантов зерновых культур по продолжительности, затратам труда и материальных средств, а также эффективности значительно уступают традиционным методам внутрисортового отбора.

1. Бакулина А.В., Широких И.Г. Генотипическая реакция ячменя на антибиотики канамицин и цефотаксим в культуре in vitro // Биологический мониторинг природно-техногенных систем: Матер. Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием. Киров, 29–30 ноября 2011 г. Киров: ООО «Лобань», 2011. Ч. 2. С. 69–72.

2. Баталова Г.А., Лисицын Е.М. Генетический контроль алюмоустойчивости овса на сортовом уровне // Съезд генетиков и селекционеров, посвящ. 200-летию со дня рожд. Ч. Дарвина. V съезд Вавиловского общества генетиков и селекционеров. М., 2009. Ч. 1. С. 179.

3. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе: Уч. пособие. М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. 160 с.

4. Внучкова В.А., Неттевич Э.Д., Чеботарева Т.М. и др. Использование методов in vitro в селекции ячменя на устойчивость к токсичности кислых почв // Докл. ВАСХНИЛ. 1989. № 7. С. 2–5.

5. Драгавцев В.А., Литун Н.П., Шкель И.М., Нечипоренко Н.Н. Модель эколого-генетического контроля количественных признаков растений // Докл. АН СССР. 1984. Т. 274. № 3. С. 720–723.

6. Животовский Л.А. Наследование приобретенных признаков: Ламарк был прав // Химия и жизнь. 2003. № 4. С. 22–26.

7. Зобова Н.В., Конышева Е.Н. Использование биотехнологических методов в повышении соле- и кислотоустойчивости ярового ячменя. Новосибирск: СО РАСХН, КНИИСХ, 2007. 124 с.

8. Иванов М.В. Биотехнологические основы создания исходного материала ярового ячменя. СПб.–Пушкин: Изд-во ГНЦ ВИР, 2001. 205 с.

9. Лисицын Е.М. Методика лабораторной оценки алюмоустойчивости зерновых культур // Докл. РАСХН. 2003. № 3. С. 5–7.

10. Лисицын Е.М. Полиморфизм адаптивных реакций сорта на уровне морфологических и биохимических показателей // Тр. по прикл. ботан., генет. и селекции. 2006. Т. 162. С. 150–154.

11. Лисицын Е.М. Потенциальная алюмоустойчивость сельскохозяйственных растений и ее реализация в условиях европейского северо-востока России: Дис. … д-ра биол. наук. М., 2005. 361 с.

12. Литовкин К.В., Игнатова С.А., Бондарь Г.П. Морфогенез в культуре незрелых зародышей изогенных линий ячменя // Цитология и генетика. 1999. Т. 33. № 5. С. 14–18.

13. Овчинникова В.Н., Варламова Н.В., Мелик-Саркисов О.С. и др. Получение регенерантов у ярового ячменя Hordeum vulgare L. в культуре in vitro // Докл. РАСХН. 2004. № 3. С. 8–10.

14. Тиунова Л.Н., Лисицын Е.М. Алюмоустойчивость образцов овса, созданных традиционными методами и методами клеточной селекции // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2009. № 4 (15). С. 9–13.

15. Удовенко Г.В. Устойчивость растений к абиотическим стрессам // Физиологические основы селекции растений. Т. 2. Ч. 2. СПб.: ВИР, 1995. С. 293–352.

16. Широких И.Г., Огородникова С.Ю., Далькэ И.В., Шуплецова О.Н. Физилого-биохимические показатели и продуктивность растений ячменя, регенерированных из каллуса в селективных системах // Докл. РАСХН. 2011. № 2. С. 6–9.

17. Широких И.Г., Шуплецова О.Н., Широких А.А. Клеточная селекция ячменя на устойчивость к токсичности алюминия (08-04-13590) // Ориентированные фундаментальные исследования и их реализация в АПК России. Сергиев Посад. 2009а. С. 79–83.

18. Широких И.Г., Шуплецова О.Н., Щенникова И.Н. Получение in vitro форм ячменя, устойчивых к токсическому действию алюминия в кислых почвах // Биотехнология. 2009б. № 3. С. 40–48.

19. Шишкин М.А. Индивидуальное развитие и уроки эволюционизма // Онтогенез. 2006. Т. 37. № 3. C. 179–198.

20. Шуплецова О.Н. Клеточная селекция ячменя на устойчивость к эдафическим стрессам // Биология клеток растений in vitro и биотехнология: Сб. статей IX Междунар. конф. М.: ИД ФБК-Пресс, 2008. С. 444–445.

21. Щенникова И.Н., Лисицын Е.М. Напряженность стрессового воздействия и генетический контроль алюмоустойчивости ячменя // Съезд генетиков и селекционеров, посвящ. 200-летию со дня рожд. Ч. Дарвина. V Съезд Вавиловского общества генетиков и селекционеров. М., 2009. Ч. 1. С. 369.

22. Bertin P., Kinet J.M., Bouharmont J. Heritable chilling tolerance improvement in rice through somaclonal variation and cell line selection // Aust. J. Bot. 1995. V. 44. P. 91–105.

23. Biswas J., Chowdhury B., Bhattacharya A., Mandal A.B. In vitro screening for increased drought tolerance in rice // In vitro Cell Dev. Biol. Plant. 2002. V. 38. P. 525–530.

24. Campbell K.A.G., Carter T.E., Anderson J.M. Aluminium tolerance of soybean callus cultures: Comparison with greenhouse and solution culture screening methods // Soybean Genet. Newslett. 1989. V. 16. P. 191–195.

25. Chowdhury B., Mandal A.B. Microspore embryogenesis and fertile plantlet regeneration in salt susceptible–salt tole rant rice hybrid // Plant Cell Tissue Org. Cult. 2001. V. 65. P. 141–147.

26. Conner A.J., Meredith C.P. Strategies for the selection and characterization of aluminium-resistant variants from cell cultures of Nicotiana plumbaginifolia // Planta. 1985. V. 166. P. 466–473.

27. Houde M., Diallo A.O. Identifi cation of genes and pathways associated with aluminum stress and tolerance using transcriptome profi ling of wheat near-isogenic lines // BioMed Central Genomics. 2008. doi:10.1186/1471-2164-9-400.

28. Kinraide T.B. Identity of the rhizotoxic aluminum species // Plant Soil. 1991. V. 134. P. 167–178.

29. Kinraide T.B. Reconsidering the rhysotoxicity of hydroxyl, sulphate, and fl uoride complex of aluminum // J. Exp. Bot. 1997. V. 48. P. 1115–1124.

30. Kinraide T.B., Parker D.R. Cation amelioration of aluminium toxicity in wheat // Plant Physiol. 1987. V. 83. P. 546–551.

31. Kinraide T.B., Ryan P.R., Kochian L.V. Interactive effects of Al3+, H+ and other cations on root elongation considered in terms of cell-surface electrical potential // Plant Physiol. 1992. V. 99. P. 1461–1468.

32. Kochian L.V., Hoekenga J.A., Pineros M.A. How do crop plants tolerate acid soils? Mechanisms of aluminum tolerance and phosphorous effi ciency // Annu. Rev. Plant Biol. 2004. V. 55. P. 459–493.

33. Komatsuda T., Enomoto S., Nakajima K. Genetics of callus proliferation and shoot differentiation in barley // J. Heredity. 1989. V. 80. Nо. 5. P. 345–350.

34. Lisitsyn E.M. Intravarietal level of aluminum resistance in cereal crops // J. Plant Nutrition. 2000. V. 23. No. 6. P. 793–804.

35. Mandal A.B., Basu A.K., Roy B. et al. Genetic management for improved aluminium and iron toxicity tolerance in rice – A review // Indian J. Biotechnol. 2004. V. 3. No. 3. P. 359–368.

36. Muyuan Y.Z., Jianwei P., Lilin W. et al. Mutation induced enhancement of Al tolerance in barley cell lines // Plant Sci. 2003. V. 164. P. 17–23.

37. Ramgareeb S., Watt M.P., Marsh C., Cooke J.A. Assessment of Al3+ availability in callus culture media for screening tolerant genotypes of Cynodon dactylon // Plant Cell Tiss. Org. Cult. 1999. V. 56. P. 65–68.

38. Roy B., Mandal A.B. Towards development of Al-toxicity tolerant lines in indica rice by exploiting somaclonal variation // Euphytica. 2005. V. 145. P. 221–227.

39. Taylor G.J., McDonald-Stephens J.L., Hunter D.B. et al. Direct measurement of aluminum uptake and distribution in single cell of Chara coralline // Plant Physiol. 2000. V. 123. P. 987–996.

40. Van Sint J.V, Costa de Macedo C., Kinet J., Bouharmont J. Selection of Al-resistant plants from a sensitive rice cultivar, using somaclonal variation, in vitro and hydroponic cultures // Euphytica. 1997. V. 97. P. 303–310.

41. Voigt P.W., Staley T.E. Selection for aluminum and acidsoil resistance in white clover // Crop Sci. 2004. V. 44. P. 38–48.

42. Yang J.L., Zheng S.J., He Y.F., Matsumoto H. Aluminum resistance requires resistance to acid stress: a case study with spinach that exudes oxalate rapidly when exposed to Al stress // J. Exp. Bot. 2005. V. 56. No. 414. P. 1197–1203.