ВЗАИМОСВЯЗЬ ПРИОНОВ С НЕКОДИРУЮЩИМИ РНК


https://doi.org/10.18699/VJ18.377

Полный текст:


Аннотация

Прионы – это альтернативные инфекционные конформации ряда клеточных белков. В отношении протеина PrPC(PrP – от англ. prion protein, С – common, обычный) прионная конформация, получившая название PrPSc (Sc – scrapie, скрейпи или почесуха овец), оказалась патологической. У млекопитающих PrPSc является этиологическим фактором трансмиссивных губчатых энцефалопатий, характеризующихся накоплением в головном мозге агрегатов PrPSc, которые обладают амилоидными свойствами. МикроРНК и длинные некодирующие РНК могут транслироваться в функциональные пептиды, оказывающие регуляторное воздействие на гены, продуктами которых они служат. Сделано предположение о роли активации специфических некодирующих РНК под влиянием прионов в качестве одного из механизмов патогенеза прионных болезней. Обнаружены изменения уровней микроРНК в тканях головного мозга, а также в экзосомах, содержащих аномальную изоформу PrPSc у больных трансмиссивными губчатыми энцефалопатиями. Выявлены ассоциации аллелей микроРНК с развитием болезни, что говорит о возможной роли специфических последовательностей некодирующих РНК в катализе образования прионов из нормального белка. Предполагается, что измененные N-концевые пространственные домены PrPScспособны связываться с регуляторными последовательностями специфических генов некодирующих РНК. В результате активируется экспрессия данных некодирующих РНК, которые, в свою очередь, могут взаимодействовать с PrPC, катализируя их преобразование в PrPSc. Происходит экспоненциальный рост количества PrPSc. В головном мозге животных и человека наблюдается активность мобильных элементов, оказывающие регуляторное влияние на дифференцировку нейрональных стволовых клеток. Транспозоны составляют основу доменных структур длинных некодирующих РНК, служат важными источниками микроРНК. Так как прионные болезни могут возникать в виде спорадических и наследственных случаев, а на восприимчивость к заболеванию влияет полиморфизм в белок-кодирующих генах и генах микроРНК, можно предположить роль роль специфического состава и особенностей функционирования транспозонов в их патогенезе. Активация транспозонов в головном мозге на определенных стадиях развития, а также под действием стресса отражается в характере экспрессии специфических некодирующих РНК, способных катализировать переход белка PrPC в PrPSc. Исследование в данном направлении может стать основой для таргетной терапии прионных болезней с использованием микроРНК в качестве мишеней.


Об авторах

Р. Н. Мустафин
Башкирский государственный университет
Россия

Уфа



Э. К. Хуснутдинова
Башкирский государственный университет; Институт биохимии и генетики Уфимского научного центра Российской академии наук
Россия


Список литературы

1. Anderson D.M., Anderson K.M., Cang C.L., Makarewich C.A., Nelson B.R., McAnally J.R., Kasaragod P., Shelton J.M., Liou J., Bassel-Duby R., Olson E.N. A micropeptide encoded by a putative long noncoding RNA regulates muscle performance. Cell. 2015;160: 595-606.

2. Aprea J., Prenninger S., Dori M., Ghosh T., Monasor L.S., Wessendorf E., Zocher S., Massalini S., Alexopoulou D., Lesche M., Dahl A., Groszer M., Hiller M., Calegari F. Transcriptome sequencing during mouse brain development identifies long noncoding RNAs functionally involved in neurogenic commitment. EMBO J. 2013;32(24):3145-3160.

3. Battistuzzi F.U., Schneider K.A., Spencer M.K., Fisher D., Chaudhry S., Escalante A.A. Profiles of low complexity regions in Apicomplexa. BMC Evol. Biol. 2016;16:47. DOI 10.1186/s12862-016-0625-0.

4. Bellingham S.A., Coleman B.M., Hill A.F. Small RNA deep sequencing reveals a distinct miRNA signature released in exosomes from prion-infected neuronal cells. Nucleic Acids Res. 2012;40(21):10937-10949.

5. Boese A.S., Saba R., Campbell K., Majer A., Medina S., Burton L., Booth T.F., Chong P., Westmacott G., Dutta S.M., Saba J.A., Booth S.A. MicroRNA abundance is altered in synaptoneurosomes during prion disease. Mol. Cell. Neurosci. 2016;71:13-24.

6. Borchert G.M., Holton N.W., Williams J.D., Hernan W.L., Bishop I.P., Dombosky J.A., Elste J.E., Gregoire N.S., Kim J.A., Koehler W.W., Lengerich J.C., Medema A.A., Nguyen M.A., Ower G.D., Ra rick M.A., Strong B.N., Tardi N.J., Tasker N.M., Wozniak D.J., Gatto C., Larson E.D. Comprehensive analysis of microRNA genomic loci identifies pervasive repetitive-element origins. Mob. Genet. Elements. 2011;1(1):8-17.

7. Burak K., Lamoureux L., Boese A., Majer A., Saba R., Niu Y., Frost K., Booth S.A. MicroRNA-16 targets mRNA involved in neurite extension and branching in hippocampal neurons during presymptoma tic prion disease. Neurobiol. Dis. 2018;112:1-13. DOI 10.1016/j.nbd.2017.12.011.

8. Couzigou J.M., Andre O., Cuillotin B., Alexandre M., Combier J.P. Use of microRNA-encoded peptide miPEP172c to stimulate nodulation in soybean. New Phytol. 2016;211(2):379-381.

9. Couzigou J.M., Lauressergues D., Becard G., Comier J.P. miRNAencoded peptides (miPEPs): A new tool to analyze the role of miRNAs in plant biology. RNA Biol. 2015;12:1178-1180.

10. De Cecco E., Legname G. The role of the prion protein in the internalization of α-synuclein amyloids. Prion. 2018;12(1):23-27. DOI 10.1080/19336896.2017.1423186.

11. Deng B., Cheng X., Li H., Qin J., Tian M., Jin G. Microarray expression profiling in the denervated hippocampus identified long noncoding RNAs functionally involved in neurogenesis. BMC Mol. Biol. 2017;18(1):15. DOI 10.1186/s12867-017-0091-2.

12. Dwivedi Y. Emerging role of microRNAs in major depressive disorder: diagnosis and therapeutic implications. Dialogues Clin. Neurosci. 2014;16(1):43-61.

13. Eigenbrod S., Frick P., Bertsch U., Mitteregger-Kretzschmar G., Mielke J., Maringer M., Piening N., Hepp A., Daude N., Windl O., Levin J., Giese A., Sakthivelu V., Tatzelt J., Kretzschmar H., Westaway D. Substitutions of PrP N-terminal histidine residues modulate scrapie disease pathogenesis and incubation time in transgenic mice. PLoS ONE. 2017;12(12):e0188989.

14. Evans E.G., Pushie M.J., Markham K.A., Lee H.W., Millhauser G.L. Interaction between prion protein’s cooperbound octarepeat domain and charged C-terminal pocket suggests a mechanism for N-terminal regulation. Structure. 2016;24(7):1057-1067.

15. Faulkner G.J. Retrotransposons: mobile and mutagenic from conception to death. FEBS Lett. 2011;585(11):1589-1594.

16. Fitzgerald K.A., Caffrey D.R. Long noncoding RNAs in innate and adaptive immunity. Curr. Opin. Immunol. 2014;26:140-146.

17. Gao C., Shi Q., Wei J., Zhou W., Xiao K., Wang J., Shi Q., Dong X.P. The associations of two SNPs in miRNA146a and one SNP in ZBTB38-RASA2 with the disease susceptibility and the clinical features of the Chinese patients of sCJD and FFI. Prion. 2018;12(1): 34-41. DOI 10.1080/19336896.2017.1405885.

18. Gim J., Ha H., Ahn K., Kim D.S., Kim H.S. Genome-wide identification and classification of microRNAs derived from repetitive elements. Genomics Inform. 2014;12(4):261-267.

19. Gonzalez-Montalban N., Makarava N., Savtchenko R., Baskakov I.V. Relationship between conformational stability and amplification efficiency of prions. Biochemistry. 2011;50(37):79337940.

20. Harbi D., Harrison P.M. Classifying prion and prion-like phenomena. Prion. 2014;8(2):pii27960.

21. Hennig S., Kong G., Mannen T., Sadowska A., Kobelke S., Blythe A., Knott G.J., Iyer K.S., Ho D., Newcombe E.A., Hosoki K., Goshima N., Kawaguchi T., Hatters D., Trinkle-Mulcahy L., Hirose T., Bond C.S., Fox A.H. Prion-like domains in RNA binding proteins are essential for building subnuclear paraspeckles. J. Cell. Biol. 2015;210(4):529-539.

22. Johnson R., Guigo R. The RIDL hypothesis: transposable elements as functional domains of long noncoding RNAs. RNA. 2014;20(7): 959-976.

23. Kyle R.A. Amyloidosis: a convoluted story. Br. J. Haematol. 2001; 114(3):529-538.

24. Lauressergues D., Couzigou J.M., Clemente H.S., Martinez Y., Dunand C., Becard G., Combier J.P. Primary transcripts of microRNAs encode regulatory peptides. Nature. 2015;520(7545):90-93.

25. Li Y., Li C., Xia J., Jin Y. Domestication of transposable elements into MicroRNA genes in plants. PLoS ONE. 2011;6:e19212.

26. Lorenzetti A.P., A de Antonio G.Y., Paschoal A.R., Domingues D.S. Plant TE-MIR DB: a database for transposable element-related microRNAs in plant genomes. Funct. Integr. Genomics. 2016;16: 235-242.

27. Lu X., Sachs F., Ramsay L., Jacques P.E., Goke J., Bourque G., Ng H.H. The retrovirus HERVH is a long noncoding RNA required for human embryonic stem cell identity. Nat. Struct. Mol. Biol. 2014; 21(4):423-425.

28. Lv S., Pan L., Wang G. Commentary: primary transcripts of microRNAs encode regulatory peptides. Front. Plant Sci. 2016;7:1436.

29. Mabbott N.A. How do PrPSc prions spread between host species, and within hosts? Pathogens. 2017;6(4). pii: E60. DOI 10.3390/pathogens6040060.

30. March Z.M., King O.D., Shorter J. Prion-like domains as epigenetic regulators, scaffolds for subcellular organization, and drives of neurodegenerative disease. Brain Res. 2016;1647:9-18.

31. Mercer T.R., Dinger M.E., Sunkin S.M., Mehler M.F., Mattick J.S. Specific expression of long noncoding RNAs in the mouse brain. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008;105(2):716-721.

32. Michelitsch M.D., Weissman J.S. A census of glutamine/asparagines-rich regions: implications for their conserved function and the prediction of novel prions. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000;97(22): 11910-11915.

33. Montag J., Hitt R., Opitz L., Schulz-Schaeffer W.J., Hunsmann G., Motzkus D. Upregulation of miRNA hsa-miR-342-3p in experimental and idiopathic prion disease. Mol. Neurodegener. 2009;4:36. DOI 10.1186/1750-1326-4-36.

34. Murakami T., Ishiguro N., Haguchi K. Transmission of systemic AA amyloidosis in animals. Vet. Pathol. 2014;51(2):363-371.

35. Mustafin R.N., Khusnutdinova E.K. Non-coding parts of genomes as the basis of epigenetic heredity. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2017;21(6):742-749. DOI 10.18699/VJ17.30-o. (in Russian)

36. Nelson B.R., Makarewich C.A., Anderson D.M., Winders B.R., Trou pes C.D., Wu F., Reese A.L., McAnally J.R., Chen X., Kevalali E.T., Cannon S.C., Houser S.R., Bassel-Duby R., Olson E.N. A peptide encoded by a transcript annotated as long noncoding RNA enhances SERCA activity in muscle. Science. 2016;351(6270):271-275.

37. Notwell J.H., Chung T., Heavner W., Bejerano G. A family of transposable elements co-opted into developmental enhancers in the mouse neocortex. Nat. Commun. 2015;6:6644.

38. Richardson S.R., Morell S., Faulkner G.J. L1 retrotransposons and somatic mosaicism in the brain. Annu. Rev. Genet. 2014;48:127.

39. Rubenstein R., Wang K.K., Chiu A., Grinkina N., Sharma D.R., Agarwal S., Lin F., Yang Z. PrPC expression and calpain activity independently mediate the effects of closed head injury in mice. Behav. Brain Res. 2018;340:29-40.

40. Ruiz-Orera J., Messeguer X., Subirana J.A., Alba M.M. Long noncoding RNAs as a source of new peptides. Elife. 2014;3:e03523. DOI 10.7554/eLife.03523.

41. Saa P., Sferrazza G.F., Ottenberg G., Oelschlegel A.M., Dorsey K., Lasmezas C.I. Strain-specific role of RNAs in prion replication. J. Virol. 2012;86(19):10494-10504.

42. Saba R., Goodman C.D., Huzarewich R.L., Robertson C., Booth S.A. A miRNA signature of prion induced neurodegeneration. PLoS ONE. 2008;3:e3652.

43. Saba R., Gushue S., Huzarewich R.L., Manguiat K., Medina S., Robertson C., Booth S.A. MicroRNA 146a (miR-146a) is overexpressed during prion disease and modulates the innate immune response and the microglial activation state. PLoS ONE. 2012;7(2):e30832.

44. Saba R., Medina S.J., Booth S.A. A functional SNP catalog of overlapping miRNA-binding sites in genes implicated in prion disease and other neurodegenerative disorders. Hum. Mutat. 2014;35(10):1233-1248.

45. Saghatelian A., Couso J.P. Discovery and сharacterization of smORF encoded bioactive polypeptides. Nat. Chem. Biol. 2015;11(12):909-916.

46. Sanz Rubio D., Lopez-Perez O., de Andres Pablo A., Bolea R., Osta R., Badiola J.J., Zaragoza P., Martin-Burriel I., Toivonen J.M. Increased circulating microRNAs miR-342-3p and miR-215p in natural sheep prion disease. J. Gen. Virol. 2017;98(2):305310.

47. Simoneau S., Thomzig A., Ruchoux M.M., Vignier N., Daus M.L., Poleggi A., Lebon P., Freire S., Durand V., Graziano S., Galeno R., Cardone F., Comoy E., Pocchiari M., Beekes M., Deslys J.P., Four nier J.G. Synthetic scrapie infectivity: interaction between recombinant PrP and scrapie brain-derived RNA. Virulence. 2015;6(2):132-144. DOI 10.4161/21505594.2014.989795.

48. Tetz G., Tetz V. Prion-like domains in phagobiota. Front. Microbiol. 2017;8:2239.

49. Timmes A.G., Moore R.A., Fischer E.R., Priora S.A. Recombinant prion refolded with lipid and RNA has the biochemical hallmarks of a prion but lacks in vivo infectivity. PLoS ONE. 2013;8(7):e71081.

50. Tycko R. Physical and structural basis for polymorphism in amyloid fibrils. Protein Sci. 2014;23(11):1528-1539.

51. Upton K.R., Gerhardt D.J., Jesuadian J.S., Richardson S.R., Sanchez-Luque F.J., Bodea G.O., Ewing A.D., Salvador-Palomegue C., van der Knaap M.S., Brennan P.M., Vanderver A., Faulkner G.J. Ubi quitous L1 mosaicism in hippocampal neurons. Cell. 2015;161(2): 228-239.

52. Wang J., Li X., Wang L., Li J., Zhao Y., Bou G., Li Y., Jiao G., Shen X., Wei R., Liu S., Xie B., Lei L., Li W., Zhou Q., Liu Z. A novel long intergenic noncoding RNA indispensable for the cleavage of mouse two-cell embryos. EMBO Rep. 2016;17:1452-1470.

53. Zhang J., Mujahid H., Hou Y., Nallamilli B.R., Peng Z. Plant long ncRNAs: a new frontier for gene regulatory control. Am. J. Plant Sci. 2013;4(5):1038-1045. DOI 10.4236/ajps.2013.45128.


Дополнительные файлы

Просмотров: 70

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-0462 (Print)
ISSN 2500-3259 (Online)