ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПРОИСХОЖДЕНИЯ РАСТЕНИЙ-РЕГЕНЕРАНТОВ В КУЛЬТУРЕ ПЫЛЬНИКОВ ЛЬНА
Аннотация
Изучали возможность прогнозирования плоидности клеток, являющихся источниками растений-регенерантов в культуре пыльников in vitro. На примере льна масличного показано, что таким способом может быть проведение анализа популяции растений-регенерантов на наличие расщепления по маркерному признаку с простым генетическим контролем. Если источником происхождения регенерантов являются микроспоры, то в их потомстве наблюдается расщепление по маркерному признаку, совпадающее с расщеплением по этому признаку на уровне гамет. В случае если источником происхождения растений-регенерантов являются спорофитные ткани, то расщепление не наблюдается.Предлагаемый подход может быть применим при культивировании не только пыльников, но и семяпочек, а также на любом виде растений, у которых эти структуры используются для получения удвоенных гаплоидов.
Ключевые слова
Об авторах
А. И. Сорока
Институт масличных культур Национальной академии аграрных наук Украины,
Запорожье, Украина
Украина
Украина
В. А. Лях
Запорожский национальный университет, Запорожье, Украина
Украина
Украина
Список литературы
1. Давыдова Н.Н. Усовершенствование метода культуры пыльников для использования в селекционном процессе капусты (Brassica oleracea L.): Автореф. дис. … канд. с.-х. наук. М.: Всерос. науч.-исслед. ин-т овощеводства Россельхозакадемии, 2008. 25 с.
2. Котлярова О.В. Усовершенствование элементов технологии получения регенерантов для создания удвоенных гаплоидов моркови (Daucus carota L.): Автореф. дис. … канд. с.-х. наук. М.: Всерос. науч.-исслед. ин-т овощеводства Россельхозакадемии, 2010. 26 с.
3. Лях В.А., Сорока А.И. Ботанические и цитогенетические особенности видов рода Linum L. и биотехнологические пути работы с ними. Запорожье: ЗНУ, 2008. 182 c.
4. Малецкая Е.И., Юданова С.С., Малецкий С.И. Гаплоидия в апозиготических семенных потомствах сахарной свеклы (Beta vulgaris L.) // Докл. АН. 2009. Т. 426. № 5. С. 710–713.
5. Муравлев А.А., Кривошеева О.Г. Методические рекомендации по получению андроклинных растений ярового рапса. М.: Россельхозакадемия, 1999. 23 с.
6. Ницше В., Венцель Г. Гаплоиды в селекции растений. М.: Колос, 1980. 128 c.
7. Паушева З.П. Практикум по цитологии растений. М.: Агропромиздат, 1988. 271 c.
8. Поляков А.В. Усовершенствование селекционного процесса льна-долгунца (Linum usitatissimum L.) на основе использования биотехнологических методов: Автореф. дис. ... д-ра биол. наук. М.: Московская ордена Ленина и ордена Трудового Красного Знамени с.-x. академия им. К.А. Тимирязева, 1998. 50 с.
9. Поляков А.В., Пролетова Н.В. Питательная среда для культивирования пыльников льна. Пат. № 2120741. Россия: Всерос. НИИ льна. Бюл. № 30. 1998.
10. Сорока А.И. Дифференциация гаплоидных и дигаплоидных растений рапса на цитологическом и морфологическом уровнях // Цитология и генетика. 2013. № 2. С. 34–39.
11. Aalders L.E. Monoploidy in cucumbers // J. Hered. 1958. V. 49. P. 41–44.
12. Bergmann R., Friedt W. Haploidy and related biotechnological methods in linseed (Linum usitatissimum L.) // In vitro Haploid Production in Higher Plants / Eds S.M. Jain, S.K. Sopory, R.E. Veilleux. Dordrecht/Boston/London: Kluwer Acad. Publ., 1997. P. 1–16.
13. Bohanec B. Ploidy determination using fl ow cytometry // Doubled Haploid Production in Crop Plants: A Manual / Eds M. Maluszynski, K.J. Kasha, B.P. Forster, I. Szarejko. Dordrecht, Netherlands: Kluwer Acad. Publ., 2003. P. 397–403.
14. Bouvier L., Chavagnat A., Zhang Y.X., Lespinasse Y. Using radiography to attempt to screen for haploid embryos in apple // Sci. Hortic. 1992. V. 52. P. 215–221.
15. Claveria E., Garcia-Mas J., Dolcet-Sanjuan R. Optimization of cucumber doubled haploid. Line production using in vitro rescue of in vivo induced parthenogenic embryos // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 2005. V. 130. No. 4. P. 555–560.
16. Griffi ths A.J.F., Miller J.H., Suzuki D.T. et al. An Introduction to Genetic Analysis. 6th ed. N.Y.: W.H. Freeman and Co., 1996. 916 p.
17. Kita K., Shigematsu Y., Yakushiji H. Triploid and haploid seedlings obtained from small seeds of lemon // J. Jap. Soc. Hort. Sci. 2001. V. 70. P. 121.
18. Lotfi M., Salehi S. Detection of cucumber parthenogenic haploid embryos by fl oating the immature seeds in liquid medium // Proc. of the IXth EUCARPIA Meeting on Genetics and Breeding of Cucurbitaceae / Ed. M. Pitrat. Avignon, France: INRA, 2008. P. 375–379.
19. Qin X., Rotino G.L. Chloroplast number in guard cells as ploidy indicator of in vitro-grown androgenic pepper plantlets // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1995. V. 41. No. 2. P. 145–149.
20. Rajender Rao K., Vaidyanath K. Biotechnology and improvement of sesamum // Plant Tissue Culture and Biotechnology – Emerging Trends / Ed. P.B. Kavi Kishor. Hyderabad, India: University Press/Orient Logman Ltd, 1999. P. 37–46.
Просмотров: 74
Послать статью по эл. почте 