DETERMINATION OF THE ORIGIN OF REGENERATED FLAX PLANTS IN ANTHER CULTURE
Abstract
The possibility to diagnose the ploidy of cells producing regenerated plants in vitro in anther culture has been studied. It is shown by the example of oil flax that population analysis of regenerated plants for segregation on the basis of a marker trait with a simple genetic control can serve as such a method. When microspores are the source of regenerants, segregation of regenerants for a marker that coincides with the segregation at the gamete level is observed. If sporophytic tissues are the source for regenerated plants, there is no segregation. The proposed approach can be applied not only to anther cultures but also to ovule cultures, as well as to any plant species where relevant structures are used to obtain doubled haploids.
About the Authors
A. I. Soroka
Institute of Oilseed Crops, National Academy of Agricultural Sciences of Ukraine, Zaporozhye, Ukraine
Ukraine
Ukraine
V. A. Lyakh
Zaporozhye National University, Zaporozhye, Ukraine
Ukraine
Ukraine
References
1. Давыдова Н.Н. Усовершенствование метода культуры пыльников для использования в селекционном процессе капусты (Brassica oleracea L.): Автореф. дис. … канд. с.-х. наук. М.: Всерос. науч.-исслед. ин-т овощеводства Россельхозакадемии, 2008. 25 с.
2. Котлярова О.В. Усовершенствование элементов технологии получения регенерантов для создания удвоенных гаплоидов моркови (Daucus carota L.): Автореф. дис. … канд. с.-х. наук. М.: Всерос. науч.-исслед. ин-т овощеводства Россельхозакадемии, 2010. 26 с.
3. Лях В.А., Сорока А.И. Ботанические и цитогенетические особенности видов рода Linum L. и биотехнологические пути работы с ними. Запорожье: ЗНУ, 2008. 182 c.
4. Малецкая Е.И., Юданова С.С., Малецкий С.И. Гаплоидия в апозиготических семенных потомствах сахарной свеклы (Beta vulgaris L.) // Докл. АН. 2009. Т. 426. № 5. С. 710–713.
5. Муравлев А.А., Кривошеева О.Г. Методические рекомендации по получению андроклинных растений ярового рапса. М.: Россельхозакадемия, 1999. 23 с.
6. Ницше В., Венцель Г. Гаплоиды в селекции растений. М.: Колос, 1980. 128 c.
7. Паушева З.П. Практикум по цитологии растений. М.: Агропромиздат, 1988. 271 c.
8. Поляков А.В. Усовершенствование селекционного процесса льна-долгунца (Linum usitatissimum L.) на основе использования биотехнологических методов: Автореф. дис. ... д-ра биол. наук. М.: Московская ордена Ленина и ордена Трудового Красного Знамени с.-x. академия им. К.А. Тимирязева, 1998. 50 с.
9. Поляков А.В., Пролетова Н.В. Питательная среда для культивирования пыльников льна. Пат. № 2120741. Россия: Всерос. НИИ льна. Бюл. № 30. 1998.
10. Сорока А.И. Дифференциация гаплоидных и дигаплоидных растений рапса на цитологическом и морфологическом уровнях // Цитология и генетика. 2013. № 2. С. 34–39.
11. Aalders L.E. Monoploidy in cucumbers // J. Hered. 1958. V. 49. P. 41–44.
12. Bergmann R., Friedt W. Haploidy and related biotechnological methods in linseed (Linum usitatissimum L.) // In vitro Haploid Production in Higher Plants / Eds S.M. Jain, S.K. Sopory, R.E. Veilleux. Dordrecht/Boston/London: Kluwer Acad. Publ., 1997. P. 1–16.
13. Bohanec B. Ploidy determination using fl ow cytometry // Doubled Haploid Production in Crop Plants: A Manual / Eds M. Maluszynski, K.J. Kasha, B.P. Forster, I. Szarejko. Dordrecht, Netherlands: Kluwer Acad. Publ., 2003. P. 397–403.
14. Bouvier L., Chavagnat A., Zhang Y.X., Lespinasse Y. Using radiography to attempt to screen for haploid embryos in apple // Sci. Hortic. 1992. V. 52. P. 215–221.
15. Claveria E., Garcia-Mas J., Dolcet-Sanjuan R. Optimization of cucumber doubled haploid. Line production using in vitro rescue of in vivo induced parthenogenic embryos // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 2005. V. 130. No. 4. P. 555–560.
16. Griffi ths A.J.F., Miller J.H., Suzuki D.T. et al. An Introduction to Genetic Analysis. 6th ed. N.Y.: W.H. Freeman and Co., 1996. 916 p.
17. Kita K., Shigematsu Y., Yakushiji H. Triploid and haploid seedlings obtained from small seeds of lemon // J. Jap. Soc. Hort. Sci. 2001. V. 70. P. 121.
18. Lotfi M., Salehi S. Detection of cucumber parthenogenic haploid embryos by fl oating the immature seeds in liquid medium // Proc. of the IXth EUCARPIA Meeting on Genetics and Breeding of Cucurbitaceae / Ed. M. Pitrat. Avignon, France: INRA, 2008. P. 375–379.
19. Qin X., Rotino G.L. Chloroplast number in guard cells as ploidy indicator of in vitro-grown androgenic pepper plantlets // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1995. V. 41. No. 2. P. 145–149.
20. Rajender Rao K., Vaidyanath K. Biotechnology and improvement of sesamum // Plant Tissue Culture and Biotechnology – Emerging Trends / Ed. P.B. Kavi Kishor. Hyderabad, India: University Press/Orient Logman Ltd, 1999. P. 37–46.
Review
Views:
407
Email this article 