Применение РНК-направленной нуклеазы Cas9 для сайт-специфической модификации генома в протопластах cибирского сорта ячменя с высокой способностью к регенерации


https://doi.org/10.18699/VJ18.447

Полный текст:


Аннотация

Модификация геномов культурных растений при помощи компонентов бактериальной защитной системы CRISPR/Cas в настоящее время является быстроразвивающейся областью прикладной науки. Методика индукции сайт-специфических изменений в растительных геномах, как правило, включает такие этапы, как конструирование генетических векторов, содержащих гены нуклеазы Cas9 и химерной направляющей РНК, доставку плазмидной ДНК или рибонуклеопротеиновых частиц в клетки растений, что приводит к внесению изменений в выбранный сайт геномной ДНК, и последующую регенерацию растений из модифицированных клеток. Применение этой технологии в селекции ограничено тем, что генотипы в разной степени подвержены генетической трансформации и различаются по способности к регенерации in vitro. Генотип-зависимость эффективности биотехнологических манипуляций особенно ярко выражена у культурных зерновых злаков. В настоящей работе была проведена оценка эффективности регенерации растений in vitro из клеток незрелых зародышей десяти сибирских сортов ячменя. Было показано, что только один из исследуемых сортов сопоставим с модельным для биотехнологических и генно-инженерных работ сортом Golden Promise. Сорт Алей продемонстрировал самую высокую эффективность регенерации среди сибирских сортов ячменя и был выбран для проведения эксперимента по модификации генома в протопластах мезофилла листа. Для проведения модификации генома было выбрано два целевых гена, которые контролируют хозяйственные признаки. Ген Nud контролирует признак голозерности или пленчатости, ген Vrs1 – признак двурядности или шестирядности. Были сконструированы генетические век торы, несущие систему модификации генома, направленную на три сайта в двух целевых генах. Конструкции были введены в протопласты методом полиэтиленгликоль-зависимой трансформации, детекция мутаций осуществлялась методом глубокого секвенирования целевых последовательностей, амплифицированных с геномной ДНК трансформированной клеточной популяции. Мутации были выявлены в 6–20 % популяции трансформированных клеток. Делеции разного размера обнаружены в трех целевых сайтах, однонуклеотидные инсерции обнаружены только в одном из сайтов. Результаты, полученные в работе, демонстрируют возможность сайт-специфической модификации генома сибирского ячменя. Дальнейшие шаги по развитию технологии сайт-направленной модификации геномов культурных злаков потребуют разработки «генотип-независимых» методов генетической трансформации клеток и последующей регенерации растений из модифицированных клеток.


Об авторах

С. В. Герасимова
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук; Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Россия
Новосибирск


А. М. Короткова
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


К. Хертиг
Институт генетики растений и исследования культурных растений им. Лейбница
Германия
Гатерслебен


С. Хикель
Институт генетики растений и исследования культурных растений им. Лейбница
Германия
Гатерслебен


Р. Хоффи
Институт генетики растений и исследования культурных растений им. Лейбница
Германия
Гатерслебен


Н. Будхагатапалли
Институт генетики растений и исследования культурных растений им. Лейбница
Германия
Гатерслебен


И. Отто
Институт генетики растений и исследования культурных растений им. Лейбница
Германия
Гатерслебен


Г. Хензель
Институт генетики растений и исследования культурных растений им. Лейбница
Германия
Гатерслебен


В. К. Шумный
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


А. В. Кочетов
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук; Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Россия
Новосибирск


Й. Кумлен
Институт генетики растений и исследования культурных растений им. Лейбница
Германия
Гатерслебен


Е. К. Хлесткина
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук; Новосибирский национальный исследовательский государственный университет; Федеральный исследовательский центр Всероссийский институт генетических ресурсов растений им. Н.И. Вавилова (ВИР)
Россия
Новосибирск, Санкт-Петербург


Список литературы

1. Bai Y., Han N., Wu J., Yang Y., Wang J., Zhu M., Bian H. A transient gene expression system using barley protoplasts to evaluate microRNAs for post-transcriptional regulation of their target genes. Plant Cell Tiss. Organ Cult. (PCTOC). 2014;119(1):211-219. DOI 10.1007/s11240-014-0527-z.

2. Budhagatapalli N., Schedel S., Gurushidze M., Pencs S., Hiekel S., Rutten T., Kusch S., Morbitzer R., Lahaye T., Panstruga R., Kumlehn J., Hensel G. A simple test for the cleavage activity of customized endonucleases in plants. Plant Methods. 2016;12:18. DOI 10.1186/s13007-016-0118-6.

3. Doench J.G., Fusi N., Sullender M., Hegde M., Vaimberg E.W., Donovan K.F., Smith I., Tothova Z., Wilen C., Orchard R., Virgin H.W., Listgarten J., Root D.E. Optimized sgRNA design to maximize activity and minimize off-target effects of CRISPR-Cas9. Nat. Biotechnol. 2016;34(2):184-191. DOI 10.1038/nbt.3437.

4. Fang Y.D., Akula C., Altpeter F. Agrobacterium-mediated barley (Hordeum vulgare L.) transformation using green fluorescent protein as a visual marker and sequence analysis of the T-DNA::barley genomic DNA junctions. J. Plant Physiol. 2002;159:1131-1138. DOI 10.1078/0176-1617-00707.

5. Gerasimova S.V., Khlestkina E.K., Kochetov A.V., Shumny V.K. Genome editing system CRISPR/Cas9 and peculiarities of its application in monocots. Russ. J. Plant Physiol. 2017;64(2):141-155. DOI 10.1134/S1021443717010071.

6. Gibson D.G., Young L., Chuang R.Y., Venter J.C., Hutchison C.A. 3rd, Smith H.O. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nat. Methods. 2009;6:343-345. DOI 10.1038/nmeth.1318.

7. Gruber A.R., Lorenz R., Bernhart S.H., Neuböck R., Hofacker I.L. The Vienna RNA websuite. Nucleic Acids Res. 2008;36(Web Server issue):W70-W74. DOI 10.1093/nar/gkn188.

8. Harwood W.A., Bartlett J.G., Alves S.C., Perry M., Smedley M.A., Leyland N., Snape J.W. Barley transformation using Agrobacteriummediated techniques. Methods Mol. Biol. 2009;478:137-147. DOI 10.1007/978-1-59745-379-0_9.

9. Hisano H., Meints B., Moscou M.J., Cistue L., Echávarri B., Sato K., Hayes P.M. Selection of transformation-effcient barley genotypes based on TFA (transformation amenability) haplotype and higher resolution mapping of the TFA loci. Plant Cell Rep. 2017;36(4):611- 620. DOI 10.1007/s00299-017-2107-2.

10. Holme I.B., Wendt T., Gil-Humanes J., Deleuran L.C., Starker C.G., Voytas D.F., Brinch-Pedersen H. Evaluation of the mature grain phytase candidate HvPAPhy_a gene in barley (Hordeum vulgare L.) using CRISPR/Cas9 and TALENs. Plant Mol. Biol. 2017;95(1-2):111- 121. DOI 10.1007/s11103-017-0640-6.

11. Holubova K., Hensel G., Vojta P., Tarkowski P., Bergougnoux V., Galuszka P. Modifcation of barley plant productivity through regulation of cytokinin content by reverse-genetics approaches. Front. Plant Sci. 2018;9:1676. DOI 10.3389/FPLS.2018.01676.

12. Kapusi E., Corcuera-Gómez M., Melnik S., Stoger E. Heritable genomic fragment deletions and small indels in the putative ENGase gene induced by CRISPR/Cas9 in barley. Front. Plant Sci. 2017;8:540. DOI 10.3389/fpls.2017.00540.

13. Korotkova A.M., Gerasimova S.V., Khlestkina E.K. Current achievements in modifying crop genes using CRISPR/Cas system. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2019. (In press).

14. Korotkova A.M., Gerasimova S.V., Shumny V.K., Khlestkina E.K. Crop genes modifed using the CRISPR/Cas system. Russ. J. Genet.: Appl. Res. 2017;7(8). DOI 10.1134/S2079059717050124.

15. Kumar N., Galli M., Ordon J., Stuttmann J., Kogel K.H., Imani J. Further analysis of barley MORC1 using a highly effcient RNA-guided Cas9 gene-editing system. Plant Biotechnol. J. 2018;16(11):1892- 1903. DOI 10.1111/pbi.12924.

16. Kumlehn J., Hensel G. Genetic transformation technology in the Triticeae. Breed. Sci. 2009;59:553-560. DOI 10.1270/jsbbs.59.553.

17. Lin C.S., Hsu C.T., Yang L.H., Lee L.Y., Fu J.Y., Cheng Q.W., Wu F.H., Hsiao H.C.W., Zhang Y., Zhang R., Chang W.J., Yu C.T., Wang W., Liao L.J., Genvin S.B., Shih M.C. Application of protoplast technology to CRISPR/Cas9 mutagenesis: from single-cell mutation detection to mutant plant regeneration. Plant Biotechnol. J. 2018;16(7): 1295-1310. DOI 10.1111/pbi.12870.

18. Lowe K., La Rota M., Hoerster G., Hastings C., Wang N., Chamberlin M., Wu E., Jones T., Gordon-Kamm W. Rapid genotype “independent” Zea mays L. (maize) transformation via direct somatic embryogenesis. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2018;54(3):240-252. DOI 10.1007/s11627-018-9905-2.

19. Lowe K., Wu E., Wang N., Hoerster G., Hastings C., Cho M.J., Scelonge C., Lenderts B., Chamberlin M., Cushatt J., Wang L., Ryan L., Khan T., Chow-Yiu J., Hua W., Yu M., Banh J., Bao Z., Brink K., Igo E., Rudrappa B., Shamseer P.M., Bruce W., Newman L., Shen B., Zheng P., Bidney D., Falco C., Register J., Zhao Z.Y., Xu D., Jones T., Gordon-Kamm W. Morphogenic regulators Baby boom and Wuschel improve Monocot transformation. Plant Cell. 2016;28(9):1998-2015. DOI 10.1105/tpc.16.00124.

20. Pourkheirandish M., Hensel G., Kilian B., Senthil N., Chen G., Sameri M., Azhaguvel P., Sakuma S., Dhanagond S., Sharma R., Mascher M., Himmelbach A., Gottwald S., Nair S.K., Tagiri A., Yukuhiro F., Nagamura Y., Kanamori H., Komatsuda T. Evolution of the grain dispersal system in barley. Cell. 2015;162(3):527-539. DOI 10.1016/J.CELL.2015.07.002.

21. Shan Q., Wang Y., Li J., Gao C. Genome editing in rice and wheat using the CRISPR/Cas system. Nature Protoc. 2014;9(10):2395-2410. DOI 10.1038/nprot.2014.157.

22. Taketa S., Amano S., Tsujino Y., Sato T., Saisho D., Kakeda K., Nomura M., Suzuki T., Matsumoto T., Sato K., Kanamori H., Kawasaki S., Takeda K. Barley grain with adhering hulls is controlled by an ERF family transcription factor gene regulating a lipid biosynthesis pathway. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008;105(10):4062-4067. DOI 10.1073/pnas.0711034105.

23. Wang W., Akhunova A., Chao S., Akhunov E. Optimizing multiplex CRISPR/Cas9-based genome editing for wheat. BioRxiv. DOI 10.1101/051342.

24. Wong N., Liu W., Wang X. WU-CRISPR: characteristics of functional guide RNAs for the CRISPR/Cas9 system. Genome Biol. 2015;16: 218. DOI 10.1186/s13059-015-0784-0.


Дополнительные файлы

Просмотров: 139

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-0462 (Print)
ISSN 2500-3259 (Online)