БИОТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ ПОТЕНЦИАЛ НОВОЙ ТЕХНИЧЕСКОЙ КУЛЬТУРЫ – МИСКАНТУС СОРТ СОРАНОВСКИЙ

Мискантус сорт Сорановский внесен в Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию, в 2013 г. Методами фенотипирования и анализа ДНК новая техническая культура отнесена к виду Miscanthus sacchariflorus. На основе биомассы мискантуса ведется разработка методов получения сахаросодержащего субстрата для биотехнологий. Для выполнения этой задачи было изучено влияние механической и химической обработок в сочетании с ферментативным гидролизом на получение сахаров из биомассы мискантуса. Наилучший результат получен при использовании помола до размера частиц ~100 мкм с последующей обработкой гидроксидом кальция. После ферментативного гидролиза таких образцов были получены субстраты с концентрацией восстанавливающих сахаров от 10 до 15 г/л.

1. Зверева Г.К. Структурная организация мезофилла листовых пластинок злаков увлажненных местообитаний // Электрон. журн. Ботан. сада-института ДВО РАН. 2010. Т. 5. P. 51–54.

2. Оболенская А.В., Ельницкая З.П., Леонович А.А. Лабораторные работы по химии древесины и целлюлозы. М.: Экология, 1991.

3. Открытый иллюстрированный атлас сосудистых растений России и сопредельных стран http://www.plantarium. ru/page/view/item/41884.html

4. Шумный В.К., Колчанов Н.А., Сакович Г.В. и др. Поиск возобновляемых источников целлюлозы для многоцелевого использования // Вестн. ВОГиС. 2010а. Т. 14. № 3. С. 569–578

5. Шумный В.К., Вепрев С.Г., Нечипоренко Н.Н. и др. Новая форма мискантуса китайского (Веерника китайского Miscanthus sinensis Anders.) как перспективный источник целлюлозосодержащего сырья // Вестн. ВОГиС. 2010б. Т. 14. № 1. С. 122–126.

6. Canilha L., Chandel A.K., dos Santos Milessi T.S. et al. Bioconversion of sugarcane biomass into ethanol: an overview about composition, pretreatment methods, detoxification of hydrolysates, enzymatic saccharification, and ethanol fermentation // J. Biomed Biotechnol. 2012. 989572. Published online 2012 November 26. doi: 10.1155/2012/989572

7. Dashtban M., Schraft H., Qin W. Fungal bioconversion of lignocellulosic residues; opportunities & perspectives // Int. J. Biol. Sci. 2009. V. 5. No. 6. P. 578–595.

8. Dohleman F.G., Long S.P. More productive than maize in the midwest: how does Miscanthus do it? // Plant. Physiol. 2009. V. 150. No. 4. P. 2104–2115.

9. Hodkinson T.R., Chase M.W., Lledó M.D. et al. Phylogenetics of Miscanthus, Saccharum and related genera (Saccharinae, Andropogoneae, Poaceae) based on DNA sequences from ITS nuclear ribosomal DNA and plastid trnLintron and trnL-F intergenic spacers // J. Plant Res. 2002b. V. 115. No. 5. P. 381–392.

10. Hodkinson T.R., Chase M.W., Takahashi C. et al. The use of dna sequencing (ITS and trnL-F), AFLP, and fluorescent in situ hybridization to study allopolyploid Miscanthus (Poaceae) // Amer. J. Bot. 2002a. V. 89. No. 2. P. 279–286. doi: 10.3732/ajb.89.2.279.

11. Jönsson L.J., Alriksson B., Nilvebrant N.-O. Bioconversion of lignocellulose: inhibitors and detoxification // Biotechnol. Biofuels. 2013. V. 6. Issue 1. P. 16. Published online 2013 doi: 10.1186/1754-6834-6-16

12. Silva J.P.A., Carneiro L.M., Roberto I.C. Treatment of rice straw hemicellulosic hydrolysates with advanced oxidative processes: a new and promising detoxification method to improve the bioconversion process // Biotechnol. Biofuels. 2013. 6: 23. Published online 2013 February 15. doi: 10.1186/1754-6834-6-23

13. Sun Q., Lin Q., Yi Z-L. et al. A taxonomic revision of Miscanthus s.l. (Poaceae) from China // Bot. J. Linn. Soc. 2010. V. 164. P. 178–220.