ТРАНСГЕННЫЕ ЖИВОТНЫЕ: ФУНДАМЕНТАЛЬНЫЕ И ПРИКЛАДНЫЕ АСПЕКТЫ
Аннотация
Геном клетки любого животного и растения постоянно контактирует с чужеродной ДНК других видов или прокариотической ДНК бактерий, грибов, вирусов и т. д. Как правило, цитоплазма клетки «справляется» с этим потоком чужеродной ДНК, поступающей с продуктами питания, расщепляя ее до нуклеотидов в специализированных цитоплазматических структурах, таких как лизосомы. В результате чужеродная ДНК не доходит до ядра клеток и, следовательно, лишена возможности «включиться» в ее геном.
Исключением являются ретровирусы, способные проникать через клеточные мембраны и достигать ядра клетки и даже встраиваться в ее геном, становясь его облигатным наследуемым компонентом. Это отдельная тема, связанная с эволюцией взаимоотношений геномов вирусов (паразитов) и клеток животных и растений, в ходе которой выработался специальный механизм, позволяющий чужеродной ДНК встраиваться в геном клеток-мишеней, тем самым его модифицируя.
Об авторе
О. Л. СеровРоссия
Список литературы
1. Brinster R.L., Chen H.Y., Trumbauer M. et al. Somatic expression of herpes thymidine kinase in mice following injection of a fusion gene into eggs // Cell. 1981. V. 27. No. 1. Pt 2. P. 223–231.
2. Burkov I.A., Serova I.A., Battulin N.R. et al. Expression of the human granulocyte–macrophage colony stimulating factor (hGM-CSF) gene under control of the 50-regulatory sequence of the goat alpha-S1-casein gene with and without a MAR element in transgenic mice // Transgenic Res. 2013. V. 22. P. 949–964.
3. Chandler K.J., Chandler R.L., Broeckelmann E.M. et al. Relevance of BAC transgene copy number in mice: transgene copy number variation across multiple transgenic lines and correlations with transgene integrity and expression // Mamm. Genome. 2007. V. 18. P. 693–708.
4. Gordon J.W., Scangos G.A., Plotkin D.J. et al. Genetic transformation of mouse embryos by microinjection of purifi ed DNA // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1980. V. 77. P. 7380–7384.
5. Kues W.A., Niemann H. Advances in farm animal transgenesis // Prev. Vet. Med. 2011. V. 102. P. 146–156.
6. Le Saux A., Houdebine L.-M., Jolivet G. Chromosome integration of BAC (bacterial artifi cial chromosome): evidence of multiple rearrangements // Transgenic Res. 2010. V. 19. P. 923–931.
7. Niemann H., Kues W.A. Application of transgenesis in livestock for agriculture and biomedicine // Anim. Reprod. Sci. 2003. V. 79. P. 291–317.
8. Niemann H., Kues W.A. Transgenic farm animals: an update // Reprod. Fertil. Dev. 2007. V. 19. P. 762–770.
9. Ornitz D.M., Palmiter R.D., Hammer R.E. et al. Specific expression of an elastase-human growth hormone fusion gene in pancreatic acinar cells of transgenic mice // Nature. 1985. V. 13. P. 600–602.
10. Pratt T., Sharp L., Nichols J. et al. Embryonic stem cells and transgenic mice ubiquitously expressing a Tau-tagged green fluorescent protein // Dev. Biol. 2000. V. 228. P. 19–28.
11. Ramίrez A., Milot E., Ponsa I. et al. Sequence and chromosomal context effects on variegated expression of keratin 5/lacZ constructs in stratifi ed epithelia of transgenic mice // Genetics. 2001. V. 158. P. 341–350.
12. Serova I.A, Dvoryanchikov G.A., Andreeva L.E. et al. A 3,387 bp 50-fl anking sequence of the goat alpha-S1-casein gene provides correct tissue-specifi c expression of human granulocyte colony-stimulating factor (hG-CSF) in the mammary gland of transgenic mice // Transgenic Res. 2011. V. 21. P. 485–498.