Preview

Вавиловский журнал генетики и селекции

Расширенный поиск

Ассоциация полиморфизма TP53 Arg72Pro с риском развития радон-индуцированного рака легкого в казахской популяции

https://doi.org/10.18699/VJ19.530

Полный текст:

Аннотация

Самый распространенный тип рака в структуре онкологических заболеваний – рак легкого, который представляет собой серьезную проблему не только в Республике Казахстан, но и по всему миру. Воздействие радона классифицируется как вторая причина развития онкологии легкого. По оценкам экспертов, естественный радиационный фон составляет 80 % от среднегодовой дозы облучения населения Казахстана, из которых 50 % приходится на радон. Однако следует отметить, что влияние радона на здоровье населения Республики Казахстан остается невыясненным. Ген-супрессор опухолей TP53 является ключевым медиатором в каскаде реакций активируемых при повреждениях ДНК в результате воздействия на клетку ионизирующего излучения. Известно, что полиморфизм TP53 Arg72Pro (rs1042522) часто встречается в азиатской популяции и считается фактором риска развития рака легкого, но до настоящего времени не была изучена его ассоциация с патогенезом этого заболевания в казахской популяции. Нет информации относительно синергетического канцерогенного эффекта воздействия радона и полиморфизма TP53 Arg72Pro (rs1042522). В этой статье представлены результаты поиска связи полиморфного варианта гена ТР53 с риском развития рака легкого, вызванного радоном, в казахской популяции. Генетическая ассоциация была оценена по методу «случай-контроль». В исследование были включены 44 пациента (подвергшиеся воздействию радона) с диагнозом рак легкого, 41 пациент с диагнозом рак легкого из регионов с допустимыми показателями содержания радона и 42 здоровых человека соответствующего возраста и пола. Мы обнаружили корреляцию между полиморфизмом гена TP53 Arg72Pro (rs1042522) и риском развития рака легкого в казахской популяции (OR = 6.95, 95 % CI = 2.41–20.05). Необходимо отметить, что лица с генотипом Arg72Pro также показали более высокую вероятность развития радониндуцированного рака легкого (OR = 8.6, 95 % CI 2.6–28.59).

Об авторах

О. Булгакова
Евразийский национальный университет им. Л.Н. Гумилева, Институт клеточной биологии и биотехнологии
Казахстан
Нур-Султан


А. Кусаинова
Евразийский национальный университет им. Л.Н. Гумилева, Институт клеточной биологии и биотехнологии
Казахстан
Нур-Султан


А. Какабаев
Кокшетауский государственный университет им. Ш. Уалиханова
Казахстан
Кокшетау


А. Каусбекова
Евразийский национальный университет им. Л.Н. Гумилева, Институт клеточной биологии и биотехнологии
Казахстан
Нур-Султан


Р. Берсимбаев
Евразийский национальный университет им. Л.Н. Гумилева, Институт клеточной биологии и биотехнологии
Казахстан
Нур-Султан


Список литературы

1. Bersimbaev R., Bulgakova O. The health effects of radon and uranium on the population of Kazakhstan. Genes Environ. 2015;37:18. DOI 10.1186/s41021-015-0019-3.

2. Bersimbaev R., Bulgakova O. Residential radon exposure and lung cancer risk in Kazakhstan. Ed. F. Adrovic. Radon. London, 2017; 93-124. DOI 10.5772/intechopen.71135.

3. Bonner M.R., Bennett W.P., Xiong W., Lan Q., Brownson R.C., Harris C.C., Field R.W., Lubin J.H., Alavanja M.C. Radon, secondhand smoke, glutathione-S-transferase M1 and lung cancer among women. Int. J. Cancer. 2006;119(6):1462-1467.

4. Bulgakova O., Zhabayeva D., Kussainova A., Pulliero A., Izzotti A., Bersimbaev R. miR-19 in blood plasma reflects lung cancer occurrence but is not specifically associated with radon exposure. Oncol. Lett. 2018;15(6):8816-8824.

5. Choi J.R., Koh S.-B., Kim H.R., Lee H., Kang D.R. Radon exposureinduced genetic variations in lung cancers among never smokers. J. Korean Med. Sci. 2018;33(29):e207.

6. Choi J.R., Koh S.-B., Park S.Y., Kim H.R., Lee H., Kang D.R. Novel genetic associations between lung cancer and indoor radon exposure. J. Cancer Prev. 2017;22(4):234-240.

7. Chowdhury M.K., Moniruzzaman M., Emran A.A., Mostafa M.G., Kuddus R.H., Uddin M.A. TP53 codon 72 polymorphisms and lung cancer risk in the Bangladeshi population. Asian. Pac. J. Cancer Prev. 2015;16(8):3493-3498.

8. Deben C., Deschoolmeester V., Lardon F., Rolfo C., Pauwels P. TP53 and MDM2 genetic alterations in non-small cell lung cancer. Evaluating their prognostic and predictive value. Crit. Rev. Oncol. Hematol. 2016;99:63-73.

9. Druzhinin V.G., Sinitsky M.Y., Larionov A.V., Volobaev V.P., Minina V.I., Golovina T.A. Assessing the level of chromosome aberrations in peripheral blood lymphocytes in long-term resident children under conditions of high exposure to radon and its decay products. Mutagenesis. 2015;30(5):677-683.

10. Francisco G., Menezes P.R., Eluf-Neto J., Chammas R. Arg72Pro TP53 polymorphism and cancer susceptibility. a comprehensive metaanalysis of 302 case-control studies. Int. J. Cancer. 2011;129(4): 920-930.

11. Hainaut P., Pfeifer G. Patterns of p53 G→T transversions in lung cancers reflect the primary mutagenic signature of DNA-damage by tobacco smoke. Carcinogenesis. 2001;22:367-374.

12. Hollstein M., Bartsch H., Wesch H., Kure E.H., Mustonen R., Mühlbauer K.R., Spiethoff A., Wegener K., Wiethege T., Müller K.M. p53 gene mutation analysis in tumors of patients exposed to alphaparticles. Carcinogenesis. 1997;18(3):511-516.

13. Hosmer D.W., Lemeshow S. Confidence interval estimation of interaction. Epidemiology. 1992;3:452-456.

14. Hu Y., McDermott M.P., Ahrendt S.A. The p53 codon 72 proline allele is associated with p53 gene mutations in non-small cell lung cancer. Clin. Cancer Res. 2005;11(7):2502-2509.

15. Jostes R.F. Genetic, cytogenetic, and carcinogenic effects of radon: a review. Mutat. Res. 1996;340(2-3):125-139.

16. Katkoori V.R., Manne U., Chaturvedi L.S., Basson M.D., Haan P., Coffey D., Bumpers H.L. Functional consequence of the p53 codon 72 polymorphism in colorectal cancer. Oncotarget. 2017;8(44):7657476586.

17. Leng S., Thomas C.L., Snider A.M., Picchi M.A., Chen W., Willis D.G., Carr T., Krzeminski J., Desai D., Shantu A., Lin A., Jacobson M.R., Belinsky S.A. Radon exposure, IL-6 promoter variants, and lung squamous cell carcinoma in former uranium miners. Environ. Health Persp. 2016;124(4):445-451.

18. Lo Y., Darby S., Noakes L., Whitley E., Silcocks P., Fleming K., Bell J. Screening for codon 249 p53 mutation in lung cancer associated with domestic radon exposure. Lancet. 1995;345-360.

19. Neumann M.P., González M.V., Pitiot A.S., Santamaría Í., Martínez C., Tardón A., Astudillo A., Balbín M. TP53 p.R72P genotype is a marker of poor prognosis in lung cancer. Cancer Biomark. 2018;21(4): 747-754.

20. Pereira L., Carvalho M.R., Fonseca C.G., Lima S.S., Cerqueira E.M., Jorge W., Castro M.C. Influence of Arg72Pro polymorphisms of TP53 on the response of buccal cells to radiotherapy. Genet. Mol. Res. 2011;10(4):3552-3558.

21. Quarto M., Pugliese M., La Verde G., Loffredo F., Roca V. Radon exposure assessment and relative effective dose estimation to inhabitants of puglia region, South Italy. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2015;12:14948-14957.

22. Robertson A., Allen J., Laney R., Curnow A. The cellular and molecular carcinogenic effects of radon exposure: a review. Int. J. Mol. Sci. 2013;14(7):14024-14063.

23. Ruano-Ravina A., Pereyra M.F., Castro M.T., Pérez-Ríos M., AbalArca J., Barros-Dios J.M. Genetic susceptibility, residential radon, and lung cancer in a radon prone area. J. Thorac. Oncol. 2014;9(8): 1073-1080.

24. Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecular Cloning: a Laboratory Manual. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989.

25. Stegnar P., Shishkov I., Burkitbayev M., Tolongutov B., Yunusov M., Radyuk R., Salbu B. Assessment of the radiological impact of gamma and radon dose rates at former U mining sites in Central Asia. J. Environ. Radioact. 2013;123:3-13.

26. Storey A., Thomas M., Kalita A., Harwood C., Gardiol D., Mantovani F., Breuer J., Leigh I.M., Matlashewski G., Banks L. Role of a p53 polymorphism in the development of human papillomavirusassociated cancer. Nature. 1998;393:229-341.

27. Taylor J., Watson M., Devereux T., Michels R., Saccomanno G., Anderson M. p53 mutation hotspot in radon-associated lung cancer. Lancet. 1994;343(8889):86-87.

28. Thomas M., Kalita A., Labrecque S., Pim D., Banks L., Matlashewski G. Two polymorphic variants of wild-type p53 differ biochemically and biologically. Mol. Cell Biol. 1999;19(2):1092-1100.

29. Vähäkangas K., Bennett W., Castrén K., Welsh J., Khan M., Blömeke B., Alavanja M., Harris C. p53 and K-ras mutations in lung cancers from former and never-smoking women. Cancer Res. 2001;61: 4350-4356.

30. Vähäkangas K., Samet J., Metcalf R., Welsh J., Bennett W., Lane D., Harris C. Mutations of p53 and ras genes in radon-associated lung cancer from uranium miners. Lancet. 1992;339(8793):576-580.

31. Wang S., Lan X., Tan S., Wang S., Li Y. P53 codon 72 Arg/Pro polymorphism and lung cancer risk in Asians: an updated meta-analysis. Tumor Biol. 2013;34(5):2511-2520.

32. WHO Handbook on Indoor Radon: A Public Health Perspective. Eds. W.J. Angell, H. Zeeb, F. Shannon. Geneva: World Health Organization, 2009.

33. Ye X.H., Bu Z.B., Feng J., Peng L., Liao X.B., Zhu X.L., Sun X.L., Yu H.G., Yan D.F., Yan S.X. Association between the TP53 polymorphisms and lung cancer risk: a meta-analysis. Mol. Biol. Rep. 2014;41(1):373-385.

34. Yngveson A., Williams C., Hjerpe A., Lundeberg J., Söderkvist P., Pershagen G. p53 mutations in lung cancer associated with residential radon exposure. Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 1999;8:433-438.

35. Zhao Y., Wu L., Yue X., Zhang C., Wang J., Li J., Sun X., Zhu Y., Feng Z., Hu W. A polymorphism in the tumor suppressor p53 affects aging and longevity in mouse models. eLife. 2018;7.e34701. DOI 10.7554/eLife.34701.


Просмотров: 100


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-0462 (Print)
ISSN 2500-3259 (Online)