Preview

Вавиловский журнал генетики и селекции

Расширенный поиск

Изучение влияния детерминант митохондриального импорта в структуре нРНК на активность комплекса нРНК/SpCas9 in vitro

https://doi.org/10.18699/VJ20.643

Полный текст:

Аннотация

О том, что нарушения структуры митохондриального генома приводят к широкому спектру нейромышечных и нейродегенеративных заболеваний, известно уже давно, но до сих пор не найдено эффективного метода лечения болезней митохондриального происхождения. В основном проблемы с терапией подобных заболеваний обусловлены состоянием гетероплазмии митохондриальной ДНК (мтДНК). Ввиду многокопийности митохондриального генома мутантные копии мтДНК часто сосуществуют с молекулами дикого типа в одной органелле. Клинические симптомы митохондриальных заболеваний и степень их манифестации напрямую зависят от количества мутантных молекул мтДНК в клетке. Смещая уровень гетероплазмии в сторону молекул дикого типа мтДНК, возможно добиться снижения негативного влияния мутации. Для этой цели разработано несколько генно-терапевтических подходов на основе TALE-нуклеаз и нуклеаз типа «цинковые пальцы», однако конструирование белковых доменов таких систем является долгим и трудоемким процессом. Cистема CRISPR/ Cas9 принципиально отличается от данных систем простотой использования, высокой эффективностью и механизмом действия. Все присущие характеристики и возможности системы делают ее перспективным инструментом в области генетической инженерии митохондрий. В настоящей статье мы впервые демонстрируем, что модификации направляющей РНК за счет вcтройки последовательностей, способствующих импорту нРНК в митохондрии, не влияют на функциональную активность комплекса нРНК/SpCas9 в условиях in vitro. Полученные результаты указывают на возможность модификации системы с сохранением ее функциональности и использования в перспективе для редактирования митохондриального генома.

Об авторах

Э. Г. Закирова
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


Ю. В. Вяткин
ООО «АкадемДжин»
Россия
Новосибирск


Н. А. Верещагина
Балтийский федеральный университет им. И. Канта
Россия
Калининград


В. В. Музыка
Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Россия
Новосибирск


И. О. Мазунин
Сколковский институт науки и технологий
Россия
Сколково


К. Е. Орищенко
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


Список литературы

1. Anders C., Niewoehner O., Duerst A., Jinek M. Structural basis of PAM-dependent target DNA recognition by the Cas9 endonuclease. Nature. 2014;513(7519):569-573. DOI 10.1038/nature13579.

2. Bian W.P., Chen Y.L., Luo J.J., Wang C., Xie S.L., Pei D.S. A knock-in strategy for editing human and zebrafish mitochondrial DNA using mito-CRISPR/Cas9 system. ACS Synth. Biol. 2019;8(4):621-632. DOI 10.1021/acssynbio.8b00411.

3. Briner A.E., Donohoue P.D., Gomaa A.A., Selle K., Slorach E.M., Nye C.H., Haurwitz R.E., Beisel C.L., May A.P., Barrangou R. Guide RNA functional modules direct Cas9 activity and orthogonality. Mol. Cell. 2014;56(2):333-339. DOI 10.1016/j.molcel.2014.09.019.

4. Calvo S.E., Mootha V.K. The mitochondrial proteome and human disease. Annu. Rev. Genomics Hum. Genet. 2010;11(1):25-44. DOI 10.1146/annurev-genom-082509-141720.

5. Chang D.D., Clayton D.A. A mammalian mitochondrial RNA processing activity contains nucleus-encoded RNA. Science. 1987;235: 1178-1184. DOI 10.1126/science.2434997.

6. Comte C., Tonin Y., Heckel-Mager A.-M., Boucheham A., Smirnov A., Auré K., Lombès A., Martin R.P., Entelis N., Tarassov I. Mitochondrial targeting of recombinant RNAs modulates the level of a heteroplasmic mutation in human mitochondrial DNA associated with Kearns Sayre Syndrome. Nucleic Acids Res. 2013;41(1):418-433. DOI 10.1093/nar/gks965.

7. Doersen C.J., Guerrier-Takada C., Altman S., Attardi G. Characterization of an RNase P activity from HeLa cell mitochondria. Comparison with the cytosol RNase P activity. J. Biol. Chem. 1985; 260(10): 5942-5949.

8. Fan S., Tian T., Chen W., Lv X., Lei X., Zhang H., Sun S., Cai L., Pan G., He L., Ou Z., Lin X., Wang X., Perez M.F., Tu Z., Ferrone S., Tannous B.A., Li J. Mitochondrial miRNA determines chemoresistance by reprogramming metabolism and regulating mitochondrial transcription. Cancer Res. 2019:79(6):1069-1084. DOI 10.1158/0008-5472.CAN-18-2505.

9. Gammage P.A., Moraes C.T., Minczuk M. Mitochondrial genome engineering: the revolution may not be CRISPR-Ized. Trends Genet. 2018;34(2):101-110. DOI 10.1016/j.tig.2017.11.001.

10. Gowher A., Smirnov A., Tarassov I., Entelis N. Induced tRNA import into human mitochondria: implication of a host aminoacyl-tRNAsynthetase. PLoS One. 2013;8(6):e66228. DOI 10.1371/journal.pone.0066228.

11. Holzmann J., Frank P., Löffler E., Bennett K.L., Gerner C., Rossmanith W. RNase P without RNA: identification and functional reconstitution of the human mitochondrial tRNA processing enzyme. Cell. 2008;135(3):462-474. DOI 10.1016/j.cell.2008.09.013.

12. Jeandard D., Smirnova A., Tarassov I., Barrey E., Smirnov A., Entelis N. Import of non-coding RNAs into human mitochondria: A critical review and emerging approaches. Cells. 2019;8(3):286. DOI 10.3390/cells8030286.

13. Jiang F., Doudna J.A. CRISPR-Cas9 structures and mechanisms. Annu. Rev. Biophys. 2017;46(1):505-529. DOI 10.1146/annurevbiophys-062215-010822.

14. Jinek M., Chylinski K., Fonfara I., Hauer M., Doudna J.A., Charpentier E. A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity. Science. 2012;337(6096):816-821. DOI 10.1126/science.1225829.

15. Jinek M., Jiang F., Taylor D.W., Sternberg S.H., Kaya E., Ma E., Anders C., Hauer M., Zhou K., Lin S., Kaplan M., Iavarone A.T., Charpentier E., Nogales E., Doudna J.A. Structures of Cas9 endonucleases reveal RNA-mediated conformational activation. Science. 2014;343(6176):1247997. DOI 10.1126/science.1247997.

16. Jo A., Ham S., Lee G.H., Lee Y.I., Kim S., Lee Y.S., Shin J.H., Lee Y. Efficient mitochondrial genome editing by CRISPR/Cas9. BioMed Res. Int. 2015;2015:305716. DOI 10.1155/2015/305716.

17. Kamenski P., Kolesnikova O., Jubenot V., Entelis N., Krasheninnikov I.A., Martin R.P., Tarassov I. Evidence for an adaptation mechanism of mitochondrial translation via tRNA import from the cytosol. Mol. Cell. 2007;26(5):625-637. DOI 10.1016/j.molcel.2007.04.019.

18. Kamenski P., Smirnova E., Kolesnikova O., Krasheninnikov I.A., Martin R.P., Entelis N., Tarassov I. tRNA mitochondrial import in yeast: Mapping of the import determinants in the carrier protein, the precursor of mitochondrial lysyl-tRNA synthetase. Mitochondrion. 2010;10(3):284-293. DOI 10.1016/j.mito.2010.01.002.

19. Kazakova H.A., Entelis N.S., Martin R.P., Tarassov I.A. The aminoacceptor stem of the yeast tRNA(Lys) contains determinants of mitochondrial import selectivity. FEBS Lett. 1999;442(2-3):193-197. DOI 10.1016/S0014-5793(98)01653-6.

20. Komor A.C., Badran A.H., Liu D.R. CRISPR-based technologies for the manipulation of eukaryotic genomes. Cell. 2017;168(1-2):20-36. DOI 10.1016/j.cell.2016.10.044.

21. Konermann S., Brigham M.D., Trevino A.E., Joung J., Abudayyeh O.O., Barcena C., Hsu P.D., Habib N., Gootenberg J.S., Nishimasu H., Nureki O., Zhang F. Genome-scale transcriptional activation by an engineered CRISPR-Cas9 complex. Nature. 2015;517(7536):583-588. DOI 10.1038/nature14136.

22. Lorenz R., Bernhart S.H., Höner zu Siederdissen C., Tafer H., Flamm C., Stadler P.F., Hofacker I.L. ViennaRNA Package 2.0. Algorithms Mol. Biol. 2011;6(1):26. DOI 10.1186/1748-7188-6-26.

23. Loutre R., Heckel A.M., Smirnova A., Entelis N., Tarassov I. Can mitochondrial DNA be CRISPRized: Pro and contra. IUBMB Life. 2018; 70(12):1233-1239. DOI 10.1002/iub.1919.

24. Ma H., Tu L.C., Naseri A., Huisman M., Zhang S., Grunwald D., Pederson T. Multiplexed labeling of genomic loci with dCas9 and engineered sgRNAs using CRISPRainbow. Nat. Biotechnol. 2016; 34(5):528-530. DOI 10.1038/nbt.3526.

25. Mali P., Yang L., Esvelt K.M., Aach J., Guell M., DiCarlo J.E., Norville J.E., Church G.M. RNA-guided human genome engineering via Cas9. Science. 2013;339/6121:823-826. DOI 10.1126/science.1232033.

26. Markantone D.M., Towheed A., Crain A.T., Collins J.M., Celotto A.M., Palladino M.J. Protein coding mitochondrial-targeted RNAs rescue mitochondrial disease in vivo. Neurobiol. Dis. 2018;117:203-210. DOI 10.1016/j.nbd.2018.06.009.

27. Martin R.P., Schneller J.M., Stahl A.J., Dirheimer G. Import of nuclear deoxyribonucleic acid coded lysine-accepting transfer ribonucleic acid (anticodon C-U-U) into yeast mitochondria. Biochemistry. 1979;18(21):4600-4605. DOI 10.1021/bi00588a021.

28. Nishimasu H., Ran F.A., Hsu P.D., Konermann S., Shehata S.I., Dohmae N., Ishitani R., Zhang F., Nureki O. Crystal structure of Cas9 in complex with guide RNA and target DNA. Cell. 2014;156(5):935- 949. DOI 10.1016/j.cell.2014.02.001.

29. Noh J.H., Kim K.M., Abdelmohsen K., Yoon J.H., Panda A.C., Munk R., Kim J., Curtis J., Moad C.A., Wohler C.M., Indig F.E., de Paula W., Dudekula D.B., De S., Piao Y., Yang X., Martindale J.L., de Cabo R., Gorospe M. HuR and GRSF1 modulate the nuclear export and mitochondrial localization of the lncRNA RMRP. Genes Dev. 2016;30(10):1224-1239. DOI 10.1101/gad.276022.115.

30. Nowak C.M., Lawson S., Zerez M., Bleris L. Guide RNA engineering for versatile Cas9 functionality. Nucleic Acids Res. 2016;44(20): 9555-9564. DOI 10.1093/nar/gkw908.

31. Orishchenko К.Е., Sofronova J.К., Chupakhin Е.G., Lunev E.A., Маzunin I.О. Delivery Cas9 into mitochondria. Geny i Kletki = Genes and Cells. 2016;11(2):100-105. (in Russisn)

32. Pfanner N., Warscheid B., Wiedemann N. Mitochondrial proteins: from biogenesis to functional networks. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2019;20:267-284. DOI 10.1038/s41580-018-0092-0.

33. Ran F.A., Hsu P.D., Wright J., Agarwala V., Scott D.A., Zhang F. Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system. Nat. Protoc. 2013;8:2281-2308. DOI 10.1038/nprot.2013.143.

34. Rubio M.A., Rinehart J.J., Krett B., Duvezin-Caubet S., Reichert A.S., Söll D., Alfonzo J.D. Mammalian mitochondria have the innate ability to import tRNAs by a mechanism distinct from protein import. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008;105(27):9186-9191. DOI 10.1073/pnas.0804283105.

35. Shao S., Zhang W., Hu H., Xue B., Qin J., Sun C., Sun Y., Wei W., Sun Y. Long-term dual-color tracking of genomic loci by modified sgRNAs of the CRISPR/Cas9 system. Nucleic Acids Res. 2016;44(9):e86- e86. DOI 10.1093/nar/gkw066.

36. Tonin Y., Heckel A.M., Vysokikh M., Dovydenko I., Meschaninova M., Rötig A., Munnich A., Venyaminova A., Tarassov I., Entelis N. Modeling of antigenomic therapy of mitochondrial diseases by mitochondrially addressed RNA targeting a pathogenic point mutation in mitochondrial DNA. J. Biol. Chem. 2014;289(19):13323-13334. DOI 10.1074/jbc.M113.528968.

37. Verechshagina N., Nikitchina N., Yamada Y., Harashima H., Tanaka M., Orishchenko K., Mazunin I. Future of human mitochondrial DNA editing technologies. Mitochondrial DNA A DNA Mapp Seq. Anal. 2019;30(2):214-221. DOI 10.1080/24701394.2018.1472773.

38. Wang G., Chen H.-W.W., Oktay Y., Zhang J., Allen E.L., Smith G.M., Fan K.C., Hong J.S., French S.W., McCaffery J.M., Lightowlers R.N., Morse H.C., Koehler C.M., Teitell M.A. PNPASE regulates RNA import into mitochondria. Cell. 2010;142(3):456-467. DOI 10.1016/j.cell.2010.06.035.

39. Wang G., Shimada E., Zhang J., Hong J.S., Smith G.M., Teitell M.A., Koehler C.M. Correcting human mitochondrial mutations with targeted RNA import. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2012;109(13):4840- 4845. DOI 10.1073/pnas.1116792109.

40. Wright A.V., Sternberg S.H., Taylor D.W., Staahl B.T., Bardales J.A., Kornfeld J.E., Doudna J.A. Rational design of a split-Cas9 enzyme complex. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015;112(10):2984-2989. DOI 10.1073/pnas.1501698112.

41. Zalatan J.G., Lee M.E., Almeida R., Gilbert L.A., Whitehead E.H., La Russa M., Tsai J.C., Weissman J.S., Dueber J.E., Qi L.S., Lim W.A. Engineering complex synthetic transcriptional programs with CRISPR RNA scaffolds. Cell. 2015;160(1-2):339-350. DOI 10.1016/j.cell.2014.11.052.


Просмотров: 51


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-0462 (Print)
ISSN 2500-3259 (Online)