Preview

Вавиловский журнал генетики и селекции

Расширенный поиск

Характеристика активной субстанции препарата дрожжей Saccharomyces сerevisiae, обладающей радиопротекторными свойствами

https://doi.org/10.18699/VJ20.658

Полный текст:

Аннотация

В работе охарактеризованы некоторые биологические особенности радиопротекторного действия препарата двуцепочечной РНК. Обнаружено, что препарат дрожжевой РНК обладает пролонгированным радиопротекторным действием при облучении животных летальной дозой в 9.4 Гр. При облучении через 1 ч и на 4-е сутки после введения 7 мг препарата РНК выживает 100 % животных на 70-е сутки наблюдения, при облучении на 8-е и 12-е сутки – 60 % животных. Были оценены временные параметры процесса репарации двуцепочечных разрывов, индуцированных γ-лучами. Выявлено, что введение препарата РНК в момент максимального количества двуцепочечных разрывов, через 1 ч после облучения, снижает эффективность радиопротекторного действия по сравнению с введением за 1 ч до облучения и через 4 ч после облучения. Проведено сравнение эффективности радиозащитного действия штатного радиопротектора Б-190 и препарата РНК в одном эксперименте. Установлено, что препарат суммарной РНК не уступает по эффективности препарату Б-190. Выживаемость на 40-е сутки после облучения для группы мышей, получавших препарат РНК, составила 78 %, для Б-190 – 67 % животных. В ходе аналитических исследований препарата суммарной РНК дрожжей обнаружилось, что препарат представляет собой смесь одноцепочечной и двуцепочечной РНК. Радиопротекторными свойствами обладает только двуцепочечная РНК. При введении 160 мкг препарата двуцепочечной РНК выживает 100 % подопытных животных после абсолютно летальной дозы гамма-радиации 9.4 Гр. Установлено, что радиозащитный эффект двуцепочечной РНК зависит не от последовательности, а от ее двуцепочечной формы, причем для осуществления радиопротекторного действия двуцепочечная РНК должна иметь «открытые» концы молекулы. Предполагается, что радиозащитное действие препарата двуцепочечной РНК связано с участием молекул РНК в корректном восстановлении поврежденного облучением хроматина в стволовых клетках крови. Сохранившие жизнеспособность стволовые гемопоэтические клетки мигрируют на периферию и достигают селезенки, где активно пролиферируют. Вновь образовавшаяся клеточная популяция восстанавливает кроветворную и иммунную системы, что определяет выживание летально облученных животных.

Об авторах

Г. С. Риттер
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


В. П. Николин
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


Н. А. Попова
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук; Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Россия
Новосибирск


А. С. Проскурина
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


П. Э. Кисаретова
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


О. С. Таранов
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Роспотребнадзора
Россия
р. п. Кольцово, Новосибирская область


Т. Д. Дубатолова
Институт молекулярной и клеточной биологии Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


Е. В. Долгова
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


Е. А. Поттер
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


С. С. Кирикович
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


Я. Р. Ефремов
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук; Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Россия
Новосибирск


С. И. Байбородин
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук; Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Россия
Новосибирск


М. В. Романенко
Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Россия
Новосибирск


М. И. Мещанинова
Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


А. Г. Веньяминова
Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


Н. А. Колчанов
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


С. С. Богачев
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


Список литературы

1. Озеров И.В., Осипов А.Н. Кинетическая модель репарации двунитевых разрывов ДНК в первичных фибробластах человека при действии редкоионизирующего излучения с различной мощностью дозы. Компьютерные исследования и моделирование. 2015;7(1):159-176. DOI 10.20537/2076-7633-2015-7-1-159-176. [Ozerov I.V., Osipov A.N. Kinetic model of DNA double-strand break repair in primary human fibroblasts exposed to low-LET irradiation with various dose rates. Kompyuternye Issledovaniya i Modelirovanie = Computer Research and Modeling. 2015;7(1):159- 176. DOI 10.20537/2076-7633-2015-7-1-159-176. (in Russian)]

2. Риттер Г.С., Николин В.П., Попова Н.А., Кисаретова П.Э., Долгова Е.В., Проскурина А.С., Поттер Е.А., Кирикович С.С., Байбородин С.И., Таранов О.С., Ефремов Я.Р., Колчанов Н.А., Богачев С.С. Изучение радиопротекторного действия двуцепочечной РНК, выделенной из дрожжей Saccharomyces cerevisiae. В: Четвертый междисципл. науч. форум с междунар. участием «Новые материалы и перспективные технологии»: Сб. материалов. М., 2018;II:161-167. [Ritter G.S., Nikolin V.P., Popova N.A., Kisaretova P.E., Dolgova E.V., Proskurina A.S., Potter E.A., Kirikovich S.S., Bayborodin S.I., Taranov O.S., Efremov Y.R., Kolchanov N.A., Bogachev S.S. Study of radioprotective action of double-stranded RNA extracted from Saccharomyces cerevisiae. In: The Fourth interdisciplinary scientific forum with international participation “New Materials and Promising Technologies”: Proceedings. Moscow, 2018;II: 161-167. (in Russian)]

3. Bärtsch S., Kang L.E., Symington L.S. RAD51 is required for the repair of plasmid double-stranded DNA gaps from either plasmid or chromosomal templates. Mol. Cell. Biol. 2000;20(4):1194-1205. DOI 10.1128/mcb.20.4.1194-1205.2000.

4. Belli M., Sapora O., Tabocchini M.A. Molecular targets in cellular response to ionizing radiation and implications in space radiation protection. J. Radiat Res. 2002;43(S):S13-S19. DOI 10.1269/jrr.43.s13.

5. Bergonié J., Tribondeau L. Interpretation of some results from radiotherapy and an attempt to determine a rational treatment technique (1906). Yale J. Biol. Med. 2003;76(4):181-182.

6. Dent P., Yacoub A., Contessa J., Caron R., Amorino G., Valerie K., HaganM.P., GrantS., Schmidt-UllrichR. Stress and radiation-induced activation of multiple intracellular signaling pathways. Radiat. Res. 2003;159(3):283-300. DOI 10.1667/0033-7587(2003)159[0283:sariao]2.0.co;2.

7. Dische Z. In: Colowick S.P., Kaplan N.O. (Eds.). Methods in Enzymology. Vol. III. New York: Acad. Press, 1957.

8. Dolgova E.V., Alyamkina E.A., Efremov Y.R., Nikolin V.P., Popova N.A., Tyrinova T.V., Kozel A.V., Minkevich A.M., Andrushkevich O.M., Zavyalov E.L., Romaschenko A.V., Bayborodin S.I., Taranov O.S., Omigov V.V., Shevela E.Y., Stupak V.V., Mishinov S.V., Rogachev V.A., Proskurina A.S., Mayorov V.I., Shurdov M.A., Ostanin A.A., Chernykh E.R., Bogachev S.S. Identification of cancer stem cells and a strategy for their elimination. Cancer Biol. Ther. 2014;15(10):1378-1394. DOI 10.4161/cbt.29854.

9. Dolgova E.V., Efremov Y.R., Orishchenko K.E., Andrushkevich O.M., Alyamkina E.A., Proskurina A.S., Bayborodin S.I., Nikolin V.P., Popova N.A., Chernykh E.R., Ostanin A.A., Taranov O.S., Omigov V.V., Minkevich A.M., Rogachev V.A., Bogachev S.S., Shurdov M.A. Delivery and processing of exogenous double-stranded DNA in mouse CD34+ hematopoietic progenitor cells and their cell cycle changes upon combined treatment with cyclophosphamide and double-stranded DNA. Gene. 2013a;528(2):74-83. DOI 10.1016/j.gene.2013.06.058.

10. Dolgova E.V., Nikolin V.P., Popova N.A., Proskurina A.S., Orishchenko K.E., Alyamkina E.A., Efremov Y.R., Baiborodin S.I., Chernykh E.R., Ostanin A.A., Bogachev S.S., Gvozdeva T.S., Malkova E.M., Taranov O.S., Rogachev V.A., PanovA.S., Zagrebelnyi S.N., Shurdov M.A. Pathological changes in mice treated with cyclophosphamide and exogenous DNA. Russ. J. Genet.: Appl. Res. 2013b; 3(4):291-304. DOI 10.1134/S2079059713040035.

11. Fridovich I. Superoxide radical and superoxide dismutases. Annu. Rev. Biochem. 1995;64(1):97-112. DOI 10.1146/annurev.bi.64.070195.000525.

12. Goodhead D.T. Initial events in the cellular effects of ionizing radiations: clustered damage in DNA. Int. J. Radiat. Biol. 1994;65(1): 7-17. DOI 10.1080/09553009414550021.

13. Leung W., Malkova A., Haber J.E. Gene targeting by linear duplex DNA frequently occurs by assimilation of a single strand that is subject to preferential mismatch correction. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997;94(13):6851-6856. DOI 10.1073/pnas.94.13.6851.

14. Li J., Read L.R., Baker M.D. The mechanism of mammalian gene replacement is consistent with the formation of long regions of heteroduplex DNA associated with two crossing-over events. Mol. Cell. Biol. 2001;21(2):501-510. DOI 10.1128/mcb.21.2.501-510.2001.

15. Likhacheva A.S., Nikolin V.P., Popova N.A., Rogachev V.A., Prokhorovich M.A., Sebeleva T.E., Bogachev S.S., Shurdov M.A. Exogenous DNA can be captured by stem cells and be involved in their rescue from death after lethal-dose γ-radiation. Gene Ther. Mol. Biol. 2007;11(2):305-314.

16. Maréchal A., Zou L. DNA damage sensing by the ATM and ATR kinases. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2013;5(9). DOI 10.1101/cshperspect.a012716.

17. Meers C., Keskin H., Storici F. DNA repair by RNA: templated, or not templated, that is the question. DNA Repair (Amst). 2016;44:17-21. DOI 10.1016/j.dnarep.2016.05.002.

18. Morgan W.F. Non-targeted and delayed effects of exposure to ionizing radiation: I. Radiation-induced genomic instability and bystander effects in vitro. Radiat. Res. 2003a;159(5):567-580. DOI 10.1667/0033-7587(2003)159[0567:nadeoe]2.0.co;2.

19. Morgan W.F. Non-targeted and delayed effects of exposure to ionizing radiation: II. Radiation-induced genomic instability and bystander effects in vivo, clastogenic factors and transgenerational effects. Radiat. Res. 2003b;159(5):581-596. DOI 10.1667/0033-7587(2003)159[0581:nadeoe]2.0.co;2.

20. Patt H.M., Tyree E.B., Straube R.L., Smith D.E. Cysteine protection against X irradiation. Science. 1949;110(2852):213-214. DOI 10.1126/science.110.2852.213.

21. Peitzsch C., Kurth I., Kunz-Schughart L., Baumann M., Dubrovska A. Discovery of the cancer stem cell related determinants of radioresistance. Radiother. Oncol. 2013;108(3):378-387. DOI 10.1016/j.radonc.2013.06.003.

22. Rogakou E.P., Boon C., Redon C., Bonner W.M. Megabase chromatin domains involved in DNA double-strand breaks in vivo. J. Cell Biol. 1999;146(5):905-915. DOI 10.1083/jcb.146.5.905.

23. Rogakou E.P., Pilch D.R., Orr A.H., Ivanova V.S., Bonner W.M. DNA double-stranded breaks induce histone H2AX phosphorylation on serine 139. J. Biol. Chem. 1998;273(10):5858-5868. DOI 10.1074/jbc.273.10.5858.

24. Shemetun O.V., Pilinska M.A. Radiation-induced bystander effect – modeling, manifestation, mechanisms, persistence, cancer risks. Probl. Radiac. Med. Radiobiol. 2019;24:65-92. DOI 10.33145/2304-8336-2019-24-65-92.

25. Storici F., Bebenek K., Kunkel T.A., Gordenin D.A., Resnick M.A. RNA-templated DNA repair. Nature. 2007;447(7142):338-341. DOI 10.1038/nature05720.

26. Symington L.S. Focus on recombinational DNA repair. EMBO Rep. 2005;6(6):512-517. DOI 10.1038/sj.embor.7400438.

27. Vogin G., Foray N. The law of Bergonié and Tribondeau: a nice formula for a first approximation. Int. J. Radiat. Biol. 2013;89(1):2-8. DOI 10.3109/09553002.2012.717732.

28. Wang Y., Xu C., Du L.Q., Cao J., Liu J.X., Su X., Zhao H., Fan F.Y., Wang B., Katsube T., Fan S.J., Liu Q. Evaluation of the comet assay for assessing the dose-response relationship of DNA damage induced by ionizing radiation. Int. J. Mol. Sci. 2013;14(11):22449- 22461. DOI 10.3390/ijms141122449.

29. Ward J.F. DNA damage produced by ionizing radiation in mammalian cells: identities, mechanisms of formation, and reparability. Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 1988;35(C):95-125. DOI 10.1016/S0079-6603(08)60611-X.


Просмотров: 59


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-0462 (Print)
ISSN 2500-3259 (Online)