Генетические аспекты устойчивости картофеля к фитофторозу
https://doi.org/10.18699/VJ21.020
- Р Р‡.МессенРТвЂВВВВВВВВжер
- РћРТвЂВВВВВВВВнокласснРСвЂВВВВВВВВРєРСвЂВВВВВВВВ
- LiveJournal
- Telegram
- ВКонтакте
- РЎРєРѕРїРСвЂВВВВВВВВровать ссылку
Полный текст:
Аннотация
Оомицет Рhytophthora infestans Mont. de Bary – основной патоген сельскохозяйственных культур семейства Пасленовые, особенно картофеля (Solanum tuberosum). С учетом того, что картофель – четвертая культура в мире по масштабам выращивания, ежегодные потери от фитофтороза огромны. Исследования базовых механизмов взаимодействия между картофелем и возбудителем фитофтороза не только расширяют фундаментальные знания в этой области, но и открывают новые возможности для влияния на эти взаимодействия с целью повышения резистентности к патогену. Взаимодействие картофеля и возбудителя фитофтороза можно рассматривать с генетической точки зрения, причем интересны как ответ картофеля на процесс колонизации со стороны P. infestans, так и изменение активности генов у фитофторы при заражении растения. Можно исследовать этот процесс через изменение профиля вторичных метаболитов хозяина и патогена. Помимо фундаментальных исследований в этой области, не меньшее значение имеют и прикладные работы в виде создания новых препаратов для защиты картофеля. Представленный обзор кратко описывает основные этапы исследований устойчивости картофеля к фитофторозу, начиная с самых первых работ. Большое внимание уделяется ключевым моментам по изменению профиля вторичных метаболитов (фитоалексинов). Отдельный раздел посвящен описанию как качественных, так количественных признаков устойчивости картофеля к возбудителю фитофтороза: их вкладу в общую резистентность, картированию и возможности регуляции. Оба вида признаков важны для селекции картофеля: качественная устойчивость за счет R-генов быстро преодолевается патогеном, в то время как пирамидирование локусов количественных признаков способствует созданию высокоустойчивых сортов. Новейшие подходы молекулярной биологии дают возможность изучать и транслятомные профили, что позволяет посмотреть на взаимодействие картофеля и возбудителя фитофтороза. Показано, что процесс колонизации картофеля отражается не только на активности различных генов и профиле вторичных метаболитов, выявлены также белки-маркеры ответа на заражение со стороны картофеля – это патоген-зависимые белки и пластидная углекислая ангидраза. Маркерами заражения от P. infestans были белки грибной целлюлозо-синтазы и гаусторий-специфический мембранный белок. В данном обзоре приведена информация по наиболее актуальным комплексным исследованиям генетических механизмов устойчивости картофеля к фитофторозу.
Об авторах
Т. С. ФроловаРоссия
Новосибирск
В. А. Черенко
Россия
Новосибирск
О. И. Синицына
Россия
Новосибирск
А. В. Кочетов
Россия
Новосибирск
Список литературы
1. Avrova A.O., Boevink P.C., Young V., GrenvilleBriggs L.J., van West P., Birch P.R., Whisson S.C. A novel Phytophthora infestans haustoriumspecific membrane protein is required for infection of potato. Cell Microbiol. 2008;10(11):22712284. https://doi.org/10.1111/j.14625822.2008.01206.x.
2. Ballvora A., Ercolano M.R., Weiss J., Meksem K., Bormann C.A., Oberhagemann P., Salamini F., Gebhardt C. The R1 gene for potato resistance to late blight (Phytophthora infestans) belongs to the leucine zipper/NBS/LRR class of plant resistance genes. Plant J. 2002; 30(3):361371. https://doi.org/10.1046/j.1365313x.2001.01292.x.
3. Bradshaw J.E., Bryan G.J., Lees A.K., McLean K., SolomonBlackburn R.M. Mapping the R10 and R11 genes for resistance to late blight (Phytophthora infestans) present in the potato (Solanum tuberosum) Rgene differentials of Black. Theor. Appl. Genet. 2006a; 112(4):744751. https://doi.org/10.1007/s0012200501799.
4. Bradshaw J.E., Hackett C.A., Lowe R., McLean K., Stewart H.E., Tierney I., Vilaro M.D., Bryan G.J. Detection of a quantitative trait locus for both foliage and tuber resistance to late blight [Phytophthora infestans (Mont.) de Bary] on chromosome 4 of a dihaploid potato clone (Solanum tuberosum subsp. tuberosum). Theor. Appl. Genet. 2006b;113(5):943951. https://doi.org/10.1007/s0012200603538.
5. Bradshaw J.E., Pande B., Bryan G.J., Hackett C.A., McLean K., Stewart H.E., Waugh R. Interval mapping of quantitative trait loci for resistance to late blight [Phytophthora infestans (Mont.) de Bary], height and maturity in a tetraploid population of potato (Solanum tuberosum subsp. tuberosum). Genetics. 2004;168(2):983995. https://doi.org/10.1534/genetics.104.030056.
6. Brugmans B., Wouters D., van Os H., Hutten R., van der Linden G., Visser R.G., van Eck H.J., van der Vossen E.A. Genetic mapping and transcription analyses of resistance gene loci in potato using NBS profiling. Theor. Appl. Genet. 2008;117(8):13791388. https://doi.org/10.1007/s0012200808717.
7. Chen Q., Tian Z., Jiang R., Zheng X., Xie C., Liu J. StPOTHR1, a NDR1/HIN1like gene in Solanum tuberosum, enhances resistance against Phytophthora infestans. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2018;496(4):11551161. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2018.01.162.
8. Chowdappa P., Nirmal Kumar B.J., Madhura S., Mohan Kumar S.P., Myers K.L., Fry W.E., Cooke D.E.L. Severe outbreaks of late blight on potato and tomato in South India caused by recent changes in the Phytophthora infestans population. Plant Pathol. 2015;64:191199. https://doi.org/10.1111/ppa.12228.
9. Chung I.M., Venkidasamy B., Upadhyaya C.P., Packiaraj G., Rajakumar G., Thiruvengadam M. Alleviation of Phytophthora infestans mediated necrotic tress in the transgenic potato (Solanum tuberosum L.) with enhanced ascorbic acid accumulation. Plants (Basel). 2019;8(10):365. https://doi.org/10.3390/plants8100365.
10. Colignon B., Dieu M., Demazy C., Delaive E., Muhovski Y., Raes M., Mauro S. Proteomic Study of SUMOylation during Solanum tuberosum-Phytophthora infestans interactions. Mol. Plant. Microbe Interact. 2017;30(11):855865. https://doi.org/10.1094/MPMI05170104R.
11. EschenLippold L., Landgraf R., Smolka U., Schulze S., Heilmann M., Heilmann I., Hause G., Rosahl S. Activation of defense against Phytophthora infestans in potato by downregulation of syntaxin gene expression. New Phytol. 2012;193(4):985996. https://doi.org/10.1111/j.14698137.2011.04024.x.
12. Fry W.E., McGrath M.T., Seaman A., Zitter T.A., McLeod A., Danies G., Small I.M., Myers K., Everts K., Gevens A.J., Gugino B.K., Johnson S.B., Judelson H., Ristaino J., Roberts P., Secor G., Seebold K.J., SnoverClift K., Wyenandt A., Grünwald N.J., Smart C.D. The 2009 late blight pandemic in the eastern United States - causes and results. Plant Dis. 2013;97(3):296306. https://doi.org/10.1094/PDIS08120791FE.
13. Fu Z.Q., Guo M., Jeong B.R., Tian F., Elthon T.E., Cerny R.L., Staiger D., Alfano J.R. A type III effector ADPribosylates RNAbinding proteins and quells plant immunity. Nature. 2007;447(7142):284288. https://doi.org/10.1038/nature05737.
14. Gebhardt C., Valkonen J.P. Organization of genes controlling disease resistance in the potato genome. Annu. Rev. Phytopathol. 2001;39: 79102. https://doi.org/10.1146/annurev.phyto.39.1.79.
15. GrenvilleBriggs L.J., Anderson V.L., Fugelstad J., Avrova A.O., Bouzenzana J., Williams A., Wawra S., Whisson S.C., Birch P.R., Bulone V., van West P. Cellulose synthesis in Phytophthora infestans is required for normal appressorium formation and successful infection of potato. Plant Cell. 2008;20(3):720738. https://doi.org/10.1105/tpc.107.052043.
16. Gyetvai G., Sønderkær M., Göbel U., Basekow R., Ballvora A., Imhoff M., Kersten B., Nielsen K.L., Gebhardt C. The transcriptome of compatible and incompatible interactions of potato (Solanum tuberosum) with Phytophthora infestans revealed by DeepSAGE analysis. PLoS One. 2012;7(2):e31526. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0031526.
17. Halim V.A., EschenLippold L., Altmann S., Birschwilks M., Scheel D., Rosahl S. Salicylic acid is important for basal defense of Solanum tuberosum against Phytophthora infestans. Mol. Plant. Microbe Interact. 2007;20(11):13461352. https://doi.org/10.1094/MPMI20111346.
18. Henriquez M.A., Soliman A., Li G., Hannoufa A., Ayele B.T., Daayf F. Molecular cloning, functional characterization and expression of potato (Solanum tuberosum) 1deoxydxylulose 5phosphate synthase 1 (StDXS1) in response to Phytophthora infestans. Plant Sci. 2016;243:7183. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2015.12.001.
19. Ingram D.S. The expression of Rgene resistance to Phytophthora infestans in tissue cultures of Solanum tuberosum. J. Gen. Microbiol. 1967;49(1):99108. https://doi.org/10.1099/0022128749199.
20. Ingram D.S., Robertson N.F. Interaction between Phytophthora infestans and tissue cultures of Solanum tuberosum. J. Gen. Microbiol. 1965;40(3):431437. https://doi.org/10.1099/00221287403431.
21. Katsui N., Murai A., Takasugi M., Imaizumi K., Masamune T., Tomiyama K. The structure of rishitin, a new antifungal compound from diseased potato tubers. J. Chem. Soc. Chem. Commun. 1968;1: 4344. https://doi.org/10.1039/C19680000043.
22. Koch A., Biedenkopf D., Furch A., Weber L., Rossbach O., Abdellatef E., Linicus L., Johannsmeier J., Jelonek L., Goesmann A., Cardoza V., McMillan J., Mentzel T., Kogel K.H. An RNAibased control of Fusarium graminearum infections through spraying of long dsRNAs involves a plant passage and is controlled by the fungal silencing machinery. PLoS Pathog. 2016;12(10). https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1005901.
23. Kuć J. Phytoalexins from the Solanaceae. In: Bailey J.A., Mansfield J.W. (Eds.). Phytoalexins. Blackie; Glasgow; London, 1982; 81105.
24. Kuć J., Rush J.S. Phytoalexins. Arch. Biochem. Biophys. 1985;236(2): 455472. https://doi.org/10.1016/00039861(85)906484.
25. Lim P.O., Lee I.C., Kim J., Kim H.J., Ryu J.S., Woo H.R., Nam H.G. Auxin response factor 2 (ARF2) plays a major role in regulating auxinmediated leaf longevity. J. Exp. Bot. 2010;61(5):14191430. https://doi.org/10.1093/jxb/erq010.
26. Louwes K.M., Hoekstra R., Mattheij W.M. Interspecific hybridization between the cultivated potato Solanum tuberosum subspecies tuberosum L. and the wild species S. circaeifolium subsp. circaeifolium Bitter exhibiting resistance to Phytophthora infestans (Mont.) de Bary and Globodera pallida (Stone) Behrens: 2. Sexual hybrids. Theor. Appl. Genet. 1992;84(34):362370. https://doi.org/10.1007/BF00229495.
27. Mangeon A., Junqueira R.M., SachettoMartins G. Functional diversity of the plant glycinerich proteins superfamily. Plant Signal Behav. 2010;5(2):99104. https://doi.org/10.4161/psb.5.2.10336.
28. Mattheij W.M., Eijlander R., de Koning J.R., Louwes K.M. Interspecific hybridization between the cultivated potato Solanum tuberosum subspecies tuberosum L. and the wild species S. circaeifolium subsp. circaeifolium Bitter exhibiting resistance to Phytophthora infestans (Mont.) de Bary and Globodera pallida (Stone) Behrens: 1. Somatic hybrids. Theor. Appl. Genet. 1992;83(4):459466. https://doi.org/10.1007/BF00226534.
29. Mosquera T., Alvarez M.F., JiménezGómez J.M., Muktar M.S., Paulo M.J., Steinemann S., Li J., Draffehn A., Hofmann A., Lübeck J., Strahwald J., Tacke E., Hofferbert H.R., Walkemeier B., Gebhardt C. Targeted and untargeted approaches unravel novel candidate genes and diagnostic SNPs for quantitative resistance of the potato (Solanum tuberosum L.) to Phytophthora infestans causing the late blight disease. PLoS One. 2016;11(6):e0156254. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0156254.
30. Muktar M.S., Lübeck J., Strahwald J., Gebhardt C. Selection and validation of potato candidate genes for maturity corrected resistance to Phytophthora infestans based on differential expression combined with SNP association and linkage mapping. Front Genet. 2015;6: 294. https://doi.org/10.3389/fgene.2015.00294.
31. Müller K.O., Behr L. Mechanism of Phytophthoraresistance of potatoes. Nature. 1949;163(4143):498499. https://doi.org/10.1038/163498a0.
32. Odeny D.A., Stich B., Gebhardt C. Physical organization of mixed protease inhibitor gene clusters, coordinated expression and association with resistance to late blight at the StKI locus on potato chromosome III. Plant Cell Environ. 2010;33(12):21492161. https://doi.org/10.1111/j.13653040.2010.02213.x.
33. PajerowskaMukhtar K., Stich B., Achenbach U., Ballvora A., Lü beck J., Strahwald J., Tacke E., Hofferbert H.R., Ilarionova E., Bellin D., Walkemeier B., Basekow R., Kersten B., Gebhardt C. Single nucleotide polymorphisms in the allene oxide synthase 2 gene are associated with field resistance to late blight in populations of tetraploid potato cultivars. Genetics. 2009;181(3):11151127. https://doi.org/10.1534/genetics.108.094268.
34. Park C.J., Park C.B., Hong S.S., Lee H.S., Lee S.Y., Kim S.C. Characterization and cDNA cloning of two glycine and histidinerich antimicrobial peptides from the roots of shepherd’s purse, Capsella bursapastoris. Plant Mol. Biol. 2000;44(2):187197. https://doi.org/10.1023/a:1006431320677.
35. Park T.H., Vleeshouwers V.G., Huigen D.J., van der Vossen E.A., van Eck H.J., Visser R.G. Characterization and highresolution mapping of a late blight resistance locus similar to R2 in potato. Theor. Appl. Genet. 2005;111(3):591597. https://doi.org/10.1007/s0012200520504.
36. Poland J.A., BalintKurti P.J., Wisser R.J., Pratt R.C., Nelson R.J. Shades of gray: the world of quantitative disease resistance. Trends Plant Sci. 2009;14(1):2129. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2008.10.006.
37. Quattrocchio F., Verweij W., Kroon A., Spelt C., Mol J., Koes R. PH4 of Petunia is an R2R3 MYB protein that activates vacuolar acidification through interactions with basichelixloophelix transcription factors of the anthocyanin pathway. Plant Cell. 2006;18(5):12741291. https://doi.org/10.1105/tpc.105.034041.
38. Rauscher G., Simko I., Mayton H., Bonierbale M., Smart C.D., Grünwald N.J., Greenland A., Fry W.E. Quantitative resistance to late blight from Solanum berthaultii cosegregates with R(Piber): insights in stability through isolates and environment. Theor. Appl. Genet. 2010;121(8):15531567. https://doi.org/10.1007/s001220101410x.
39. Restrepo S., Myers K.L., del Pozo O., Martin G.B., Hart A.L., Buell C.R., Fry W.E., Smart C.D. Gene profiling of a compatible interaction between Phytophthora infestans and Solanum tuberosum suggests a role for carbonic anhydrase. Mol. Plant Microbe Interact. 2005;18(9):913922. https://doi.org/10.1094/MPMI180913.
40. Robertson N.F., Friend J., Aveyard M., Brown J., Huffee M., Homans A.L. The accumulation of phenolic acids in tissue culture pathogen combinations of Solanum tuberosum and Phytophthora infestans. J. Gen. Microbiol. 1968;54(2):261268. https://doi.org/10.1099/00221287542261.
41. Rohwer F., Fritzemeier K.H., Scheel D., Hahlbrock K. Biochemical reactions of different tissues of potato (Solanum tuberosum) to zoospores or elicitors from Phytophthora infestans: Accumulation of sesquiterpenoid phytoalexins. Planta. 1987;170(4):556561. https://doi.org/10.1007/BF00402991.
42. Ruocco M., Ambrosino P., Lanzuise S., Woo S.L., Lorito M., Scala F. Four potato (Solanum tuberosum) ABCG transporters and their expression in response to abiotic factors and Phytophthora infestans infection. J. Plant Physiol. 2011;168(18):22252233. https://doi.org/10.1016/j.jplph.2011.07.008.
43. Santa J.D., BerdugoCely J., CelyPardo L., SotoSuárez M., Mosquera T., Galeano M.C.H. QTL analysis reveals quantitative resistant loci for Phytophthora infestans and Tecia solanivora in tetraploid potato (Solanum tuberosum L.). PLoS One. 2018;13(7). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0199716.
44. Simko I. Comparative analysis of quantitative trait loci for foliage resistance to Phytophthora infestans in tuberbearing Solanum species. Am. J. Pot. Res. 2002;79:125132. https://doi.org/10.1007/BF02881521.
45. Slaymaker D.H., Navarre D.A., Clark D., del Pozo O., Martin G.B., Klessig D.F. The tobacco salicylic acidbinding protein 3 (SABP3) is the chloroplast carbonic anhydrase, which exhibits antioxidant activity and plays a role in the hypersensitive defense response. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002;99(18):1164011645. https://doi.org/10.1073/pnas.182427699.
46. SolomonBlackburn R.M., Stewart H.E., Bradshaw J.E. Distinguishing majorgene from field resistance to late blight (Phytophthora infestans) of potato (Solanum tuberosum) and selecting for high levels of field resistance. Theor. Appl. Genet. 2007;115(1):141149. https://doi.org/10.1007/s0012200705500.
47. Stewart H.E., Bradshaw J.E., Pand B. The effect of the presence of Rgenes for resistance to late blight (Phytophthora infestans) of potato (Solanum tuberosum) on the underlying level of field resistance. Plant Pathology. 2003;52(2):193198. https://doi.org/10.1046/j.13653059.2003.00811.x.
48. Tan M.Y., Hutten R.C., Celis C., Park T.H., Niks R.E., Visser R.G., van Eck H.J. The R(Pimcd1) locus from Solanum microdontum involved in resistance to Phytophthora infestans, causing a delay in infection, maps on potato chromosome 4 in a cluster of NBSLRR genes. Mol. Plant Microbe Interact. 2008;21(7):909918. https://doi.org/10.1094/MPMI2170909.
49. Tomiyama K., Takakuwa M., Takase N. The metabolic activity in healthy tissue neighbouring the infected cells in relation to resistance to Phytophthora infestans (Mont.) de By in potatoes. Phytopathol. Z. 1958;31:237250.
50. Van der Vossen E., Sikkema A., Hekkert B., Gros J., Stevens P., Muskens M., Wouters D., Pereira A., Stiekema W., Allefs S. An ancient R gene from the wild potato species Solanum bulbocastanum confers broadspectrum resistance to Phytophthora infestans in cultivated potato and tomato. Plant J. 2003;36(6):867882. https://doi.org/10.1046/j.1365313x.2003.01934.x.
51. Vert G., Walcher C.L., Chory J., Nemhauser J.L. Integration of auxin and brassinosteroid pathways by Auxin Response Factor 2. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008;105(28):98299834. https://doi.org/10.1073/pnas.0803996105.