Preview

Вавиловский журнал генетики и селекции

Расширенный поиск

Дифференциация штаммов Bacillus anthracis на основе SNP- и VNTR-полиморфизма геномов

https://doi.org/10.18699/VJGB-22-68

Аннотация

Bacillus anthracis являются возбудителем сибирской язвы. Для эпидемиологии этой инфек- ции имеет значение не только идентификация этиологического агента, но и выяснение закономерности его эволюции и распространения. Современные методы молекулярной биологии позволяют определить ряд генетических маркеров, пригодных для индикации и дифференциации штаммов B. anthracis. К таким маркерам относят VNTR-локусы – последовательности, организованные в геноме в виде тандемных повторов, а также SNP – отличия в последовательности ДНК в сравниваемых локусах размером в один нуклеотид. Целью настоящей работы была оценка эффективности совместного применения SNP-анализа и ПЦР-амплификации VNTR-локусов с анализом температуры плавления ампликонов высокого разрешения для идентификации и дифференциации штаммов возбудителя сибирской язвы. Исследовали семь штаммов B. anthracis, полученных из образцов почвы и трупов животных, в качестве референс-микроорганизма был вакцинный штамм B. anthracis СТИ-1. Для молекулярно-генетической характеристики данных бактерий проведен анализ 12 однонуклеотидных полиморфизмов, а также вариабельности восьми VNTR-локусов, для определения различий в которых был впервые использован метод определения температур плавления ПЦР-продуктов в присутствии интеркалирующего красителя EvaGreen (ЗАО «Синтол», Россия). Для детекции SNP применен метод полимеразной цепной реакции (ПЦР) с использованием двойных TaqMan-зондов. Обнаружено, что все изучаемые вирулентные штаммы, кроме B. anthracis № 1 и 3, по SNP-профилю не могут быть отнесены к какой-либо филогенетической подгруппе возбудителя сибирской язвы. Методический подход, включающий в себя анализ SNP- и VNTR-последовательностей, позволил дифференцировать между собой штаммы B. anthracis № 1–4, в то время как бактерии B. anthracis № 5–7 демонстрируют одинаковые SNP- и HRM-профили и, как следствие, формируют один кластер. Таким образом, показана принци- пиальная возможность использования рассмотренной в этой работе методики для предварительного анализа эпизоотической ситуации при вспышках сибирской язвы.

Об авторах

Е. А. Анисимова
Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности
Россия

Научный городок-2, Казань



Н. А. Фахрутдинов
Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности
Россия

Научный городок-2, Казань



Д. А. Миргазов
Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности
Россия

Научный городок-2, Казань



Е. А. Додонова
Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности
Россия

Научный городок-2, Казань



И. А. Елизарова
Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности
Россия

Научный городок-2, Казань



М. Е. Горбунова
Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности
Россия

Научный городок-2, Казань



Н. И. Хаммадов
Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности
Россия

Научный городок-2, Казань



Л. И. Зайнуллин
Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности
Россия

Научный городок-2, Казань



К. А. Осянин
Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности
Россия

Научный городок-2, Казань



Список литературы

1. Achtman M. Evolution, population structure, and phylogeography of genetically monomorphic bacterial pathogens. Annu. Rev. Microbiol. 2008;62:53-70. DOI 10.1146/annurev.micro.62.081307.162832.

2. Afanas’ev M.V., Kravets E.V., Dugarzhapova Z.F., Takaishvili V.E., Polovinkina V.S., Balakhonov S.V. Comparative multilocus VNTR and SNP analysis of Bacillus anthracis vaccine strains. Mol. Genet. Microbiol. Virol. 2014;29(2):86-92. DOI 10.3103/S0891416814020025.

3. Birdsell D.N., Pearson T., Price E.P., Hornstra H.M., Nera R.D., Stone N., Gruendike J., Kaufman E.L., Pettus A.H., Hurbon A.N., Buchhagen J.L., Harms N.J., Chanturia G., Gyuranecz M., Wagner D.M., Keim P.S. Melt analysis of mismatch amplification mutation assays Melt-MAMA: a functional study of a cost-effective SNP genotyping assay in bacterial models. PLoS One. 2012;7(3):e32866. DOI 10.1371/journal.pone.0032866.

4. Bondareva O.S., Savchenko S.S., Tkachenko G.A., Abueva A.I., Muratova Yu.O., Antonov V.A. Modern approaches to the genotyping of causative agents of particularly dangerous infections. Epidemiologiya i Infektsionnye Bolezni = Epidemiology and Infectious Diseases. 2014;1:34-44. (in Russian)

5. Chang C.H., Chang Y.C., Underwood A. VNTRDB: a bacterial variable number tandem repeat locus database. Nucleic Acids Res. 2007; 35(Database issue):D416-D421. DOI 10.1093/nar/gkl872.

6. Derzelle S., Laroche S., Le Flèche P., Hauck Y., Thierry S., Vergnaud G., Madani N. Characterization of genetic diversity of Bacillus anthracis in France by using high-resolution melting assays and multilocus variable-number tandem-repeat analysis. J. Clin. Microbiol. 2011;49(12):4286-4292. DOI 10.1128/JCM.05439-11.

7. Eremenko E.I., Pisarenko S.V., Aksenova L.Yu., Ryazanova A.G., Zhirov A.M., Semenova O.V., Bobrysheva O.V., Kovalev D.A., Kulichenko A.N. Phylogenetics, evolution, and phylogeography of Bacillus anthracis. Bakteriologiya = Bacteriology. 2018;3(2):57-63. DOI 10.20953/2500-1027-2018-2-57-63. (in Russian)

8. Eremenko E.I., Ryazanova A.G., Tsygankova O.I., Tsygankova E.A., Buravtseva N.P., Kulitchenko A.N. Genotype diversity of Bacillus anthracis strains isolated from the Сaucasus region. Mol. Genet. Microbiol. Virol. 2012;27(2):74-78. DOI 10.3103/S0891416812020024.

9. Gierczynski R., Jackubczak A., Jagielski M. Extended multiple-locus variable-number tandem-repeat analysis of Bacillus anthracis strains isolated in Poland. Pol. J. Microbiol. 2009;58(1):3-7.

10. Graham R., Liew M., Meadows C., Lyon E., Wittwer C.T. Distinguishing different DNA heterozygotes by high-resolution melting. Clin. Chem. 2005;51(7):1295-1298. DOI 10.1373/clinchem.2005.051516.

11. Hugh-Jones M., Blackburn J. The ecology of Bacillus anthracis. Mol. Aspects Med. 2009;30(6):356-367. DOI 10.1016/j.mam.2009.08.03.

12. Jackson P.J., Hill K.K., Laker M.T., Ticknor L.O., Keim P. Genetic comparison of Bacillus anthracis and its close relatives using amplified fragment length polymorphism and polymerase chain reaction analysis. J. Appl. Microbiol. 1999;87(2):263-269. DOI 10.1046/j.1365-2672.1999.00884.x.

13. Jackson P.J., Walthers E.A., Kalif A.S., Richmond K.L., Adair D.M., Hill K.K., Kuske C.R., Andersen G.L., Wilson K.H., Hugh-Jones M., Keim P. Characterization of the variable-number tandem repeats in vrrA from different Bacillus anthracis isolates. Appl. Environ. Microbiol. 1997;63(4):1400-1405. DOI 10.1128/aem.63.4.1400-1405.1997.

14. Keim P., Gruendike J.M., Klevytska A.M., Schupp J., Challacombe J., Okinaka R. The genome and variation of Bacillus anthracis. Mol. Aspects Med. 2009;30(6):397-405. DOI 10.1016/j.mam.2009.08.005.

15. Keim P., Price L.B., Klevytska A.M., Smith K.L., Schupp J.M., Okinaka R., Jackson P.J., Hugh-Jones M.E. Multiple-locus variablenumber tandem repeat analysis reveals genetic relationships within Bacillus anthracis. J. Bacteriol. 2000;182(10):2928-2936. DOI 10.1128/JB.182.10.2928-2936.2000.

16. Keim P., Van Ert M.N., Pearson T., Vogler A.J., Huynh L.Y., Wagner D.M. Anthrax molecular epidemiology and forensics: using the appropriate marker for different evolutionary scales. Infect. Genet. Evol. 2004;4(3):205-213. DOI 10.1016/j.meegid.2004.02.005.

17. Kenefic L., Pearson T., Okinaka R., Schupp J., Wagner D., Ravel J., Hoffmaster A., Trim C.P., Chung W.-K., Beaudry J.A., Foster J., Mead J., Keim P. Pre-Columbian origins for North American anthrax. PLoS One. 2009;4(3):e4813. DOI 10.1371/journal.pone.0004813.

18. Koteneva E.A., Tsygankova O.I., Kalinin A.V., Abramovich A.V. The spectrum of canSNP genotypes as an indication of intraspecific genetic and phenotypic diversity of Bacillus anthracis strains isolated in North Caucasus and in neighboring areas. Meditsinskiy Vestnik Severnogo Kavkaza = Medical News of North Caucasus. 2019; 14(4):580-582. DOI 10.14300/mnnc.2019.14144. (in Russian)

19. Kravets E.V., Dugarzhapova Z.F., Takaishvili V.E., Ivanova T.A., Chesnokova M.V., Balakhonov S.V. Biological and molecular properties of Bacillus anthracis strains isolated in Siberia and the Russian Far East (1959–2013). Problemy Osobo Opasnykh Infektsiy = Problems of Particularly Dangerous Infections. 2018;3:54-59. DOI 10.21055/0370-1069-2018-3-54-59. (in Russian)

20. Le Flèche P., Hauck Y., Onteniente L., Prieur A., Denoeud F., Ramisse V., Sylvestre P., Benson G., Ramisse F., Vergnaud G. A tandem repeats database for bacterial genomes: application to the genotyping of Yersinia pestis and Bacillus anthracis. BMC Microbiol. 2001;1:2. DOI 10.1186/1471-2180-1-2.

21. Logvin F.V., Kondratenko T.A., Vodyanitskya S.Y. Anthrax in the world, CIS, and Russian Federation (literature review). Meditsinskiy Vestnik Yuga Rossii = Medical Herald of the South of Russia. 2017; 8(3):17-22. DOI 10.21886/2219-8075-2017-8-3-17-22.

22. Margraf R.L., Mao R., Highsmith W.E., Holtegaard L.M., Wittwer C.T. Mutation scanning of the RET protooncogene using high-resolution melting analysis. Clin. Chem. 2006;52(1):138-141. DOI 10.1373/clinchem.2005.052951.

23. MUK 4.2.2941-11 Organization and Protocol of Anthrax Laboratory Diagnostics in Municipal, Regional, and Federal Laboratories: Methodological Guidelines. Moscow: Rospotrebnadzor Federal Hygiene and Epidemiology Center, 2011. (in Russian)

24. Pisarenko S.V., Eremenko E.I., Ryazanova A.G., Kovalev D.A., Buravtseva N.P., Aksenova L.Yu., Dugarzhapova Z.F., Evchenko A.Yu., Kravets E.V., Semenova O.V., Bobrisheva O.V., Kuznetsova I.V., Golovinskaya T.M., Volynkina A.S., Balakhonov S.V., Kulichenko A.N. Phylogenetic analysis of Bacillus anthracis strains from Western Siberia reveals a new genetic cluster in the global population of the species. BMC Genomics. 2019;20(1):692. DOI 10.1186/s12864-019-6060-z.

25. Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989.

26. Selander R.K., Caugant D.A., Ochman H., Musser J.M., Gilmour M.N., Whittam T.S. Methods of multilocus enzyme electrophoresis for bacterial population genetics and systematics. Appl. Environ. Microbiol. 1986;51(5):873-884. DOI 10.1128/aem.51.5.873-884.1986.

27. Thierry S., Tourterel C., Le Flèche P., Derzelle S., Dekhil N., Mendy Ch., Colaneri C., Vergnaud G., Madani N. Genotyping of french Bacillus anthracis strains based on 31-loci multi locus VNTR analysis: epidemiology, marker evaluation, and update of the internet genotype database. PLoS One. 2014;9(6):e95131. DOI 10.1371/journal.pone.0095131.

28. Timofeev V.S., Bakhteeva I.V., Dyatlov I.A. Genotyping of Bacillus anthracis and closely related microorganisms. Russ. J. Genet. 2018;54(1):1-11. DOI 10.1134/S1022795418010118.

29. Van Ert M.N., Easterday W.R., Huynh L.Y., Okinaka R.T., Hugh-Jones M.E., Ravel J., Zanecki S.R., Pearson T., Simonson T.S., U’Ren J.M., Kachur S.M., Leadem-Dougherty R.R., Rhoton S.D., Zinser G., Farlow J., Coker P.R., Smith K.L., Wang B., Kenefic L.J., Fraser-Liggett C.M., Wagner D.M., Keim P. Global genetic population structure of Bacillus anthracis. PLoS One. 2007;2(5):e461. DOI 10.1371/journal.pone.0000461.

30. Wang D., Wang B., Zhu L., Wu S., Lyu Y., Feng E., Pan C., Jiao L., Cui Y., Liu X., Wang H. Genotyping and population diversity of Bacillus anthracis in China based on MLVA and canSNP analysis. Microbiol. Res. 2020;233:126414. DOI 10.1016/j.micres.2020.126414.

31. Winchell J.M., Wolff B.J., Tiller R., Bowen M.D., Hoffmaster A.R. Rapid identification and discrimination of Brucella isolates by use of real-time PCR and high-resolution melt analysis. J. Clin. Microbiol. 2010;48(3):697-702. DOI 10.1128/JCM.02021-09.


Рецензия

Просмотров: 984


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-3259 (Online)