Анализ геномного распределения сайтов связывания транскрипционных факторов GAGA и CNC в развитии Drosophila melanogaster


https://doi.org/10.18699/VJ16.193

Полный текст:


Аннотация

На основании доступных данных ChIP-seq и ChIP-chip экспериментов, выполненных с использованием антител к транскрипционным факторам GAGA и CNC, проведен анализ распределения по геному участков связывания этих факторов в эмбриогенезе (возраст эмбрионов 0–12 и 16–24 ч), а также на стадии белой предкуколки дрозофилы. Показано, что основная часть мест связывания GAGA и CNC попадает в промоторные районы и интроны генов, при этом максимальная плотность пиков связывания обоих факторов приходится на область старта транскрипции. Показано также, что у эмбрионов в возрасте как 0–12, так и 16–24 ч развития наблюдается неслучайная колокализация GAGA и CNC, в то время как на стадии белой предкуколки колокализации этих транскрипционных факторов в масштабе генома выявить не удается. Для того чтобы очертить круг генов, для которых возможна совместная регуляция GAGA и CNC, было осуществлено исследование их совместного распределения в аннотированных регуляторных районах (промоторная область и участки, соответствующие 5’-UTR и 3’-UTR мРНК). Оказалось, что совокупности генов, в регуляторных районах которых обнаружено связывание обоих факторов, сильно различаются на разных стадиях. Если у эмбрионов в возрасте 0–12 ч 353 гена характеризуются пересечением пиков ChIP-seq GAGA и CNC, а в возрасте 16–24 ч число таких генов составляет 611, то всего лишь 61 ген является «общим» для обеих стадий. Предполагается, что различные подгруппы генов-мишеней этих факторов регулируются разными сочетаниями изоформ GAGA и CNC, паттерны экспрессии которых изменяются в ходе эмбриогенеза дрозофилы. Функциональный анализ генов, в регуляторных районах которых найдена колокализация GAGA и CNC на всех исследованных стадиях развития, показывает обогащение генами, контролирующими эмбриогенез, развитие нервной системы и крыла дрозофилы.


Об авторах

И. И. Брусенцов
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук»
Россия
Новосибирск, Россия


Д. А. Карагодин
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук»
Россия
Новосибирск, Россия


Э. М. Баричева
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук»
Россия
Новосибирск, Россия


Т. И. Меркулова
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук»
Россия
Новосибирск, Россия


Список литературы

1. Adryan B., Teichmann S.A. The developmental expression dynamics of Drosophila melanogaster transcription factors. Genome Biol. 2010; 11(4):R40.

2. Arnold C.D., Gerlach D., Stelzer C., Boryn L.M., Rath M., Stark A. Genome-wide quantitative enhancer activity maps identified by STARR-seq. Science. 2013;339(6123):1074-1077.

3. Benyajati C., Mueller L., Xu N., Pappano M., Gao J., Mosammaparast M., Conklin D., Granok H., Craig, C., Elgin S. Multiple isoforms of GAGA factor, a critical component of chromatin structure. Nucl. Acids Res. 1997;25(16):3345-3353.

4. Bhat K.M., Farkas G., Karch F., Gyurkovics H., Gausz J., Schedl P. The GAGA factor is required in the early Drosophila embryo not only for transcriptional regulation but also for nuclear division. Development (Cambridge, England). 1996;122(4):1113-1124.

5. Bolger A.M., Lohse M., Usadel B. Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinformatics (Oxford, England). 2014; 30(15):2114-2120.

6. Bulger M., Groudine M. Functional and mechanistic diversity of distal transcription enhancers. Cell. 2011;144(3):327-339.

7. Campos-Ortega J.A., Hartenstein V. The Embryonic Development of Drosophila Melanogaster. Berlin; Heidelberg: Springer, 1997.

8. Charoensawan V., Wilson D., Teichmann S.A. Genomic repertoires of DNA-binding transcription factors across the tree of life. Nucl. Acids Res. 2010;38(21):7364-7377.

9. Diehl A.G., Boyle A.P. Deciphering ENCODE. Trends Genet. 2016; 32(4):238-249.

10. Espinas M.L., Jimenez-Garcia E., Vaquero A., Canudas S., Bernues J., Azorin F. The N-terminal POZ domain of GAGA mediates the formation of oligomers that bind DNA with high affinity and specificity. J. Biol. Chemistry. 1999;274:16461-16469.

11. Farkas G., Gausz J., Galloni M., Reuter G., Gyurkovics H., Karch F. The Trithorax-like gene encodes the Drosophila GAGA factor. Nature. 1994;371(6500):806-808.

12. Farnham P.J. Insights from genomic profiling of transcription factors. Nat. Rev. Genet. 2009;10(9):605-616.

13. Filion G.J., van Bemmel J.G., Braunschweig U., Talhout W., Kind J., Ward L.D., Brugman W., de Castro I.J., Kerkhoven R.M., Bussemaker H.J., van Steensel B. Systematic protein location mapping reveals five principal chromatin types in Drosophila cells. Cell. 2010; 143(2):212- 224.

14. Frith M.C., Valen E., Krogh A., Hayashizaki Y., Carninci P., Sandelin A. A code for transcription initiation in mammalian genomes. Genome Res. 2008;18(1):1-12.

15. Granok H., Leibovitch B.A., Shaffer C.D., Elgin S.C. Chromatin. Gaga over GAGA factor. Curr. Biol. 1995;5(3):238-241.

16. Hammonds A.S., Bristow C.A., Fisher W.W., Weiszmann R., Wu S., Hartenstein V., Kellis M., Yu B., Frise E., Celniker S.E. Spatial expression of transcription factors in Drosophila embryonic organ development. Genome Biol. 2013;14(12):R140.

17. Harbison C.T., Gordon D.B., Lee T.I., Rinaldi N.J., Macisaac K.D., Danford T.W., Hannett N.M., Tagne J.-B., Reynolds D.B., Yoo J., Jennings E.G., Zeitlinger J., Pokholok D.K., Kellis M., Rolfe P.A., Takusagawa K.T., Lander E.S., Gifford D.K., Fraenkel E., Young R.A. Transcriptional regulatory code of a eukaryotic genome. Nature. 2004;431(7004):99-104.

18. Hoskins R.A., Carlson J.W., Wan K.H., Park S., Mendez I., Galle S.E., Booth B.W., Pfeiffer B.D., George R.A., Svirskas R., Krzywinski M., Schein J., Accardo M.C., Damia E., Messina G., Méndez-Lago M., de Pablos B., Demakova O.V., Andreyeva E.N., Boldyreva L.V., Marra M., Carvalho A.B., Dimitri P., Villasante A., Zhimulev I.F., Rubin G.M., Karpen G.H., Celniker S.E. The Release 6 reference sequence of the Drosophila melanogaster genome. Genome Res. 2015;25(3):445-458.

19. Ingham P.W. The molecular genetics of embryonic pattern formation in Drosophila. Nature. 1988;335(6185):25-34.

20. Iyer E.P.R., Iyer S.C., Sullivan L., Wang D., Meduri R., Graybeal L.L., Cox D.N. Functional genomic analyses of two morphologically distinct classes of Drosophila sensory neurons: post-mitotic roles of transcription factors in dendritic patterning. PloS ONE. 2013;8(8):e72434.

21. Karagodin D.A., Omelina E.S., Fedorova E.V., Baricheva E.M. Identification of functionally significant elements in the second intron of the Drosophila melanogaster Trithorax-like gene. Gene. 2013;520(2): 178-184.

22. Kvon E.Z., Stampfel G., Yanez-Cuna J.O., Dickson B.J., Stark A. HOT regions function as patterned developmental enhancers and have a distinct cis-regulatory signature. Genes Develop. 2012;26(9): 908-913.

23. Langmead B., Salzberg S.L. Fast gapped-read alignment with Bowtie 2. Nature Methods. 2012;9(4):357-359.

24. Lelli K.M., Slattery M., Mann R.S. Disentangling the many layers of eukaryotic transcriptional regulation. Ann. Rev. Genet. 2012;46(1):43-68.

25. Li H., Handsaker B., Wysoker A., Fennell T., Ruan J., Homer N., Marth G., Abecasis G., Durbin R. & 1000 Genome Project Data Processing Subgroup The Sequence Alignment/Map format and SAMtools. Bioinformatics (Oxford, England). 2009;25(16):2078-2079.

26. McGinnis N., Ragnhildstveit E., Veraksa A., McGinnis W. A cap “n” collar protein isoform contains a selective Hox repressor function. Development (Cambridge, England). 1998;125(22):4553-4564.

27. Merkulova T.I., Ananko E.A., Ignat’eva E.V., Kolchanov N.A. Regulatory transcription codes in eukaryotic genomes. Genetika = Genetics (Moscow). 2013;49(1):37-54. (in Russian)

28. Mohler J., Mahaffey J.W., Deutsch E., Vani K. Control of Drosophila head segment identity by the bZIP homeotic gene cnc. Development (Cambridge, England). 1995;121(1):237-247.

29. Moorman C., Sun L.V., Wang J., de Wit E., Talhout W., Ward L.D., Greil F., Lu X.-J., White K.P., Bussemaker H.J., van Steensel B. Hotspots of transcription factor colocalization in the genome of Drosophila melanogaster. Proc. Natl. Acad. Sci. 2006;103:12027-12032.

30. Nègre N., Brown C.D., Ma L., Bristow C.A., Miller S.W., Wagner U., … White K.P. A cis- regulatory map of the Drosophila genome. Nature. 2011;471(7339):527-531. http://doi.org/10.1038/nature09990.

31. Nègre N., Brown C.D., Shah P.K., Kheradpour P., Morrison C.A., Henikoff J.G., … White K.P. A comprehensive map of insulator elements for the Drosophila genome. PLoS Genetics. 2010;6(1): e1000814. http://doi.org/10.1371/journal.pgen.1000814.

32. O’Brien T., Wilkins R.C., Giardina C., Lis J.T. Distribution of GAGA protein on Drosophila genes in vivo. Genes Development. 1995;9(9): 1098-1110.

33. Ochoa-Espinosa A., Small S. Developmental mechanisms and cis-regulatory codes.Curr. Opin. Gen. Dev. 2006;16(2):165-170.

34. Pagans S., Ortiz-Lombardia M., Espinas M.L., Bernues J., Azorin F. The Drosophila transcription factor tramtrack (TTK) interacts with Trithorax-like (GAGA) and represses GAGA-mediated activation. Nucl. Acids Res. 2002;30(20):4406-4413.

35. Perelygina L.M., Baricheva E.M., Sebeleva T.E., Kokoza V.A. The evolutionarily conserved gene Nc70F expressed in nerve tissue of Drosophila melanogaster encodes a protein homologous to the mouse delta transcription factor. Genetika = Genetics (Moscow). 1993;29(10):1597-1607.

36. Rivera-Pomar R., Jãckle H. From gradients to stripes in Drosophila embryogenesis: filling in the gaps. Trends Genet. 1996;12(11):478-483.

37. Roy S., Ernst J., Kharchenko P.V., Kheradpour P., Negre N., Eaton M.L., Landolin J.M., Bristow C.A., Ma L.J., Lin M.F., … Kellis M. Iden-tification of functional elements and regulatory circuits by Drosophila modENCODE. Science. 2010;330(6012):1787-1797.

38. Schertel C., Albarca M., Rockel-Bauer C., Kelley N.W., Bischof J., Hens K., van Nimwegen E., Basler K., Deplancke B. A large-scale, in vivo transcription factor screen defines bivalent chromatin as a key property of regulatory factors mediating Drosophila wing development. Genome Res. 2015;25(4):514-523.

39. Segal E., Raveh-Sadka T., Schroeder M., Unnerstall U., Gaul U. Predicting expression patterns from regulatory sequence in Drosophila segmentation. Nature. 2008;451(7178):535-540.

40. Slattery M., Ma L., Spokony R.F., Arthur R.K., Kheradpour P., Kundaje A., Nègre N., Crofts A., Ptashkin R., Zieba J., Ostapenko A., Suchy S., Victorsen A., Jameel N., Grundstad A.J., Gao W., Moran J.R., Rehm E.J., Grossman R.L., Kellis M., White K.P. Diverse patterns of genomic targeting by transcriptional regulators in Drosophila melanogaster. Genome Res. 2014;24(7):1224-1235.

41. Soeller W.C., Oh C.E., Kornberg T.B. Isolation of cDNAs encoding the Drosophila GAGA transcription factor. Mol. Cell. Biol. 1993; 13(12):7961-7970.

42. Tomancak P., Ohler U. Mapping the complexity of transcription control in higher eukaryotes. Genome Biol. 2010;11(4):115.

43. Veraksa A., McGinnis N., Li X., Mohler J., McGinnis W. Cap “n” collar B cooperates with a small Maf subunit to specify pharyngeal development and suppress deformed homeotic function in the Drosophila head. Development (Cambridge, England). 2000;127(18): 4023- 4037.

44. Zhang Y., Liu T., Meyer C.A., Eeckhoute J., Johnson D.S., Bernstein B.E., Nusbaum C., Myers R.M., Brown M., Li W., Liu X.S. Modelbased analysis of ChIP-Seq (MACS). Genome Biol. 2008;9(9):R137.


Дополнительные файлы

Просмотров: 121

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-0462 (Print)
ISSN 2500-3259 (Online)