ИЗУЧЕНИЕ КОНТРОЛЯ ФОРМИРОВАНИЯ СИМБИОЗА У РАЗНЫХ СИМБИОТИЧЕСКИХ МУТАНТОВ ГОРОХА (PISUM SATIVUM L.) С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ВЕГЕТАТИВНЫХ ПРИВИВОК
Аннотация
С использованием метода вегетативных прививок по типу «стебель/корень» изучено 8 индуцированных химическими мутагенами симбиотических мутантов гороха (Pisum sativum L.). Установлено, что у бесклубеньковых мутантов К 20а и К1005м, мутантов с неэффективными клубеньками К287 и К1а, а также суперклубеньковых мутантов К 10а и К12а симбиотические признаки определяются корнем. Напротив, у суперклубеньковых мутантов К301 и К22а этот признак контролируется стеблем. Сделан вывод о том, что у суперклубеньковых мутантов К10а и К12а, с одной стороны, и К301 и К22а –с другой, реализуются разные механизмы формирования признака супернодуляции.
Ключевые слова
Об авторах
Е. Ю. ВласоваРоссия
К. К. Сидорова
Россия
М. Н. Гляненко
Россия
Т. М. Мищенко
Россия
Список литературы
1. Павлова З.Б., Лутова Л.А. Клубенькообразование как модель для изучения дифференцировки у высших растений // Генетика. 2000. Т. 36. № 6. С. 1173–1188.
2. Сидорова К.К., Ужинцева Л.П. Использование мутантов для выявления генов, контролирующих симбиотические признаки у гороха // Генетика. 1992. Т. 28. № 4. С. 144–151.
3. Сидорова К.К., Ужинцева Л.П. Локализация мутантного гена nod4, контролирующего супернодуляцию у гороха // Докл. РАН. 1994. Т. 336. № 6. С. 847–849.
4. Сидорова К.К., Шумный В.К. Новый ген гороха (Pisum sativum L.) Nod5-nod5, контролирующий нодуляцию // Докл. РАН. 1997. Т. 353. № 5. С. 703–704.
5. Сидорова К.К., Шумный В.К. Создание и генетическое изучение коллекции симбиотических мутантов гороха (Pisum sativum L.) // Генетика. 2003. Т. 39. № 4. С. 501–509.
6. Холодарь А.В., Сидорова К.К., Шумный В.К. Изучение уровня фитогормонов у разных типов симбиотических мутантов гороха // Генетика. 2001. Т. 37. № 11. С. 1517–1521.
7. Чесноков В.А., Базырина Е.Н. Выращивание растений без почвы на искусственных средах // Вестн. с.-х. науки. 1957. № 4. С. 121–128.
8. Abd-Alla M.H. Regulation of nodule formation in soybean-Bradyrhizobium symbiosis is controlled by shoot or/and root signals // Plant Growth Regulation. 2001. V. 34. No. 2. P. 241–250.
9. Caetano-Anolles G., Bauer W.D. Feedback regulation of nodule formation in alfalfa // Planta. 1988. V. 175. P. 546–557.
10. Caetano-Anolles G., Gresshoff P.M. Plant genetic control of nodulation // Annu. Rev. Microbiol. 1991. V. 45. P. 345–382.
11. Delves A.C., Mathews A., Day D.A. et al. Regulation of the soybean-Rhizobium nodule symbiosis by shoot and root factors // Plant Physiol. 1986. V. 82. P. 588–590.
12. Gresshoff P.M. Molecular genetic analysis of nodulation genes in soybean // Plant Breed. Rev. 1993. V. 11. P. 275–318.
13. Hardy R.W.F., Holsten R.D., Jackson E.K. et al. The acetyleneethylene assay for N2-fi xation: laboratory and fi eld evaluation // Plant Physiol. 1968. V. 43. No. 8. P. 1185–1207.
14. Hirsch A.M., Fang Y. Plant hormones and nodulation: what’s the connection? // Plant Mol. Biol. 1994. V. 26. P. 5–9.
15. Ikeda J. Analysis of regulation site and manner of abundant nodulation in a soybean (Glycine max (L.) Merr.) cultivar, Kitamusume, using grafting techniques // Soil Sci. Plant Nutr. 2001. V. 47. No. 4. P. 703–710.
16. Kneen B.E., Weeden N.F., LaRue T.A. Nonnodulating mutants of Pisum sativum (L.) cv. Sparkle // J. Hered. 1994. V. 85. No. 2. P. 129–133.
17. LaRue T.A., Weeden N.F. The symbiosis genes of pea // Pisum Genet. 1992. V. 24. P. 5–12.
18. LaRue T.A., Temnykh S., Weeden N.F. Sym18, a novel gene conditioning altered strain specifi city in Pisum sativum cv. Sparkle // Plant and Soil. 1996. V. 180. No. 2. P. 191–195.
19. Lee S.H., Ashley D.A., Boerma H.R. Regulation of nodule development in supernodulating mutants and wild-type soybean // Crop Sci. 1991. V. 31. No. 3. P. 688–693.
20. Li D.X., Kinkema M., Gresshoff P.M. Autoregulation of nodulation (AON) in Pisum sativum (pea) involves signaling events associated with both nodule primordia development and nitrogen fi xation // J. Plant Physiol. 2009. V. 166. No. 9. P. 955–967.
21. Nutman P.S. Nuclear and cytoplasmic inheritance of resistance to infection by nodule bacteria in red clover // Heredity. 1949. V. 3. P. 263–291.
22. Nutman P.S. The infl uence of the legume in root-nodule symbiosis: a comparative study of host determinants and functions // Biol. Rev. 1956. V. 31. P. 109–151.
23. Postma J.G., Jacobsen E., Feenstra W.J. Three pea mutants with an altered nodulation studied by genetic analysis and grafting // J. Plant Physiol. 1988. V. 132. P. 424–430.
24. Sagan M., Huguet T., Duc G. Phenotypic characterization and classifi cation of nodulation mutants of pea (Pisum sativum L.) // Plant Sci. 1994. V. 100. P. 59–70.
25. Sagan M., Gresshoff P.M. Kinetics of nodule development in pea cv. Frisson and in two supernodulating mutants // Abstr. of the 10th Intern. Congr. on Nitrogen Fixation. St-Petersburg. Russia. 1995. P. 289.
26. Sagan M., Duc G. Sym28 and sym29, two new genes involved in regulation of nodulation in pea (Pisum sativum L.) // Symbiosis. 1996. V. 20. No. 3. P. 229–245.
27. Sidorova K.K., Shumny V.K., Vlasova E.Yu. et al. A new gene for supernodulation in pea nod6 // Pisum Genet. 2003. V. 35. P. 28–29.
28. Stougaard J. Regulators and regulation of legume root nodule development // Plant Physiol. 2000. V. 124. P. 531–540.
29. Phillips D.A. A cotyledonous inhibitor of root nodulation in Pisum sativum // Physiol. Plant. 1971. V. 25. P. 482–487.