Cравнительное изучение репликативных свойств противоопухолевых рекомбинантных вирусов осповакцины на культурах клеток глиобластомы человека U87 и почки мартышки CV-1


https://doi.org/10.18699/VJ16.207

Полный текст:


Аннотация

В современном мире одно из активно развивающихся направлений в лечении онкологических заболеваний – виротерапия, особенностью которой является избирательное уничтожение раковых клеток при минимальном воздействии на здоровые клетки организма. Перспективной основой для создания онколитических препаратов могут стать ортопоксвирусы, имеющие ряд преимуществ перед другими вирусными векторами, одно из которых – большая емкость генома, что позволяет встраивать в их геном гены, кодирующие белки с различными противоопухолевыми свойствами. В данной работе проведено сравнительное изучение репликативных свойств десяти различных вариантов штамма ЛИВП вируса осповакцины (ВОВ), в которых встроены дополнительные гены гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора, апоптоз-индуцирующего белка TRAIL и гена зеленого флуоресцирующего белка, на перевиваемой культуре клеток глиобластомы человека U87 и почки африканской зеленой мартышки CV-1. Кроме того, изучен вирус с пятью удаленными генами вирулентности (гемагглютинина, γ-интер-ферон-связывающего белка, тимидинкиназы, комплемент- связывающего белка и Bcl-2-подобного ингибитора апоптоза), характеризующийся значительно меньшей реактогенностью и нейровирулентностью по сравнению с исходным штаммом ЛИВП ВОВ. Полученные данные свидетельствуют о том, что в культуре клеток глиобластомы активнее всего реплицируются различные варианты ВОВ с нарушенным геном тимидинкиназы.


Об авторах

Р. А. Максютов
Федеральное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор»
Россия

Кольцово, Новосибирская область, Россия



И. В. Колосова
Федеральное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор»
Россия
Кольцово, Новосибирская область, Россия


Т. В. Трегубчак
Федеральное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор»
Россия
Кольцово, Новосибирская область, Россия


И. А. Разумов
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук»
Россия
Новосибирск, Россия


С. Н. Щелкунов
Федеральное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук»
Россия
Кольцово, Новосибирская область, Россия


Список литературы

1. Bienkowska-Szewczyk K., Szewczyk B. Expression of genes coding for viral glycoproteins in heterologous systems. Acta Biochim. Pol. 1999;2:325-339.

2. Chiocca E.A., Aguilar L.K., Bell S.D., Kaur B., Hardcastle J., Cavaliere R., McGregor J., Lo S., Ray-Chaudhuri A., Chakravarti A., Grecula J., Newton H., Harris K.S., Grossman R.G., Trask T.W., Baskin D.S., Monterroso C., Manzanera A.G., Aguilar-Cordova E., New P.Z. Phase IB study of gene-mediated cytotoxic immunotherapy adjuvant to up-front surgery and intensive timing radiation for malignant glioma. J. Clin. Oncol. 2011;29(27):3611-3619. DOI 10.1200/JCO.2011.35.5222.

3. Ding Z.Y., Wei Y.Q. Cancer biotherapy: Progress in China. Recent Advances Cancer Res. Ther. 2012:1-31. DOI 10.1016/B978-0-12-397833-2.00001-7.

4. Doniņa S., Strēle I., Proboka G., Auziņš J., Alberts P., Jonsson B., Venskus D., Muceniece A. Adapted ECHO-7 virus Rigvir immunotherapy (oncolytic virotherapy) prolongs survival in melanoma patients after surgical excision of the tumour in a retrospective study. Melanoma Res. 2015;25(5):421-426. DOI 10.1097/CMR.0000000000000180.

5. Hulou M.M., Cho C.F., Chiocca E.A., Bjerkvig R. Experimental therapies: gene therapies and oncolytic viruses. Handb. Clin. Neurol. 2016;134:183-197. DOI 10.1016/B978-0-12-802997- 8.00011-6.

6. Jackson C., Westphal M., Quiñones-Hinojosa A. Complications of glioma surgery. Handb. Clin. Neurol. 2016;134:201-218. DOI 10.1016/B978-0-12-802997-8.00012-8.

7. Karim R., Palazzo C., Evrard B., Piel G. Nanocarriers for the treatment of glioblastoma multiforme: Current state-of-the-art. J. Control. Release. 2016;227:23-37. DOI 10.1016/j.jconrel.2016.02.026.

8. Liang M. Clinical development of oncolytic viruses in China. Curr. Pharm. Biotechnol. 2012;13(9):1852-1857.

9. Louis D.N., Ohgaki H., Wiestler O.D., Cavenee W.K., Burger P.C., Jouvet A., Scheithauer B.W., Kleihues P. The 2007 WHO classification of tumours of the central nervous system. Acta Neuropathol. 2007; 114(2):97-109. DOI 10.1007/s00401-007-0243-4.

10. Maksyutov R.A., Tregubchak T.V., Denisova N.I., Maksyutov A.Z., Gavrilova E.V. Creating a modern platform comprising a set of oncolytic viruses with immune-stimulating properties. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal = Russian Immunological Journal. 2013; 7(4):456-459. (in Russian)

11. Moolten F.L. Tumor chemosensitivity conferred by inserted herpes thymidine kinase genes: paradigm for a prospective cancer control strategy. Cancer Res. 1986;46(10):5276-5281.

12. Perry A., Wesseling P. Histologic classification of gliomas. Handb. Clin. Neurol. 2016;134:71- 95. DOI 10.1016/B978-0-12-802997-8.00005-0.

13. Petrov I.S., Goncharova E.P., Kolosovа I.V., Pozdnyakov S.G., Schelkunov S.N., Zenkova M.A., Vlasov V.V. Antitumor effect of the LIVP-GFP recombinant vaccinia virus. Doklady Akademii nauk = Reports of the Academy of Sciences. 2013;451(5):592-597. (in Russian)

14. Pol J., Kroemer G., Galluzzi L. First oncolytic virus approved for melanoma immunotherapy. Oncoimmunol. 2015;5(1):e1115641. DOI 10.1080/2162402X.2015.1115641.

15. Snider J.W., Mehta M. Principles of radiation therapy. Handb. Clin. Neurol. 2016;134:131-147. DOI 10.1016/B978-0-12-802997-8.00008-6.

16. Stupp R., Mason W.P., van den Bent M.J., Weller M., Fisher B., Taphoorn M.J., Belanger K., Brandes A.A., Marosi C., Bogdahn U., Curschmann J., Janzer R.C., Ludwin S.K., Gorlia T., Allgeier A., Lacombe D., Cairncross J.G., Eisenhauer E., Mirimanoff R. Radiotherapy plus concomitant and adjuvant temozolomide for glioblastoma. N. Engl. J. Med. 2005;352:987- 996.

17. Urazova L.N., Kuznetsova T.I. Oncolytic viruses in oncology. Sibirskiy onkologicheskiy zhurnal = Siberian Journal of Oncology. 2013;4: 28-35. (in Russian)

18. Weibel S., Raab V., Yu Y.A., Worschech A., Wang E., Marincola F.M., Szalay A.A. Viral- mediated oncolysis is the most critical factor in the late-phase of the tumor regression process upon vaccinia virus infection. BMC Cancer. 2011;11:68. DOI 10.1186/1471-2407-11-68.

19. Westphal M., Ylä-Herttuala S., Martin J., Warnke P., Menei P., Eckland D., Kinley J., Kay R., Ram Z.; ASPECT Study Group. Adenovirus- mediated gene therapy with sitimagene ceradenovec followed by intravenous ganciclovir for patients with operable high-grade glioma (ASPECT): a randomised, open-label, phase 3 trial. Lancet Oncol. 2013;14(9):823-833. DOI 10.1016/S1470-2045(13)70274-2.

20. Yakubitskyi S.N., Kolosova I.V., Maksyutov R.A., Shchelkunov S.N. Attenuation of vaccinia virus. Acta Naturae. 2015;7:108-117. (in Russian)

21. Zav’yalov E.L., Razumov I.A., Gerlinskaya L.A., Romashchenko A.V. In vivo MRI visualization of growth and morphology in the orthotopic xenotransplantation U87 glioblastoma mouse SCID model. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2015;19(4):460-465. DOI 10.18699/VJ15.061. (in Russian)


Дополнительные файлы

Просмотров: 90

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-0462 (Print)
ISSN 2500-3259 (Online)