Особенности экспрессионного профиля больных злокачественной меланомой в зависимости от ответа на иммунотерапию


https://doi.org/10.18699/VJ17.314

Полный текст:


Аннотация

Одним из важнейших направлений современной молекулярной генетики и биомедицины является поиск предиктивных маркеров, помогающих выбрать наиболее эффективный способ лечения и препарат, а также индивидуально подобрать его дозировку. Особенно перспективными считаются те маркеры, которые могут обеспечить возможность применения неинвазивной, так называемой жидкостной биопсии. Этот метод позволяет оценить состояние опухоли по анализу естественных жидкостей организма, таких как кровь, моча или слюна. Подобные исследования наиболее удобны в случаях, когда необходимо проводить мониторинг эффективности терапии, чтобы вовремя зафиксировать момент возникнове ния резистентности опухолевых клеток, начало рецидива и перей ти на следующую линию терапии. При лечении агрессивных и быстро метастазирующих злокачественных новообразований, таких как меланома, наличие достоверных маркеров, позволяющих быстро и точно определить тактику лечения, особенно  важно. В последнее время появляется все больше исследований, посвященных поиску предиктивных маркеров эффективности иммунотерапии. Меланома характеризуется высокой иммуногенностью, в связи с чем она стала модельным объектом для исследования и внедрения новых подходов иммунотерапии. В настоящей работе проведено сравнение двух групп больных метастатической меланомой кожи с различным ответом на иммунотерапию блокаторами иммунных контрольных точек с целью идентифицировать новые предиктивные экспрессионные биомаркеры среди микро­ и матричных РНК, а также определить гены, ответственные за возникновение объективного ответа на терапию у пациентов. В исследовании выявлено несколько микроРНК со значительным изменением содержания в опухолевой ткани пациентов, по­разному отвечающих на иммуно терапию. Обнаружены также различия на уровне экспрессии их генов­мишеней, которые позволят более детально проанализировать молекулярные механизмы, определяющие чувствительность или резистентность клеток злокачественной меланомы к действию иммунотерапии. На основе полученных результатов предложены экспрессионные маркеры (мРНК и микроРНК), кото рые после дальнейшей апробации могут быть использованы как предикторы ответа опухолей злокачественной меланомы к иммунотерапии.

Об авторах

Е. Н. Лукьянова
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук.
Россия
Москва.


М. С. Федорова
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук.
Россия
Москва.


Е. А. Пудова
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук.
Россия
Москва.


Т. В. Наседкина
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук; Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина Министерства здравоохранения Российской Федерации.
Россия
Москва.


Е. В. Степанова
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина Министерства здравоохранения Российской Федерации.
Россия
Москва.


К. М. Нюшко
Национальный медицинский исследовательский центр радиологии Министерства здравоохранения Российской Федерации.
Россия
Москва.


А. Ю. Попов
Городская клиническая больница им. Д.Д. Плетнева Департамента здравоохранения города Москвы.
Россия
Москва.


Н. В.  Коробан
Национальный медицинский исследовательский центр радиологии Министерства здравоохранения Российской Федерации.
Россия
Москва.


А. А. Дмитриев
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук.
Россия
Москва.


М. В. Киселева
Национальный медицинский исследовательский центр радиологии Министерства здравоохранения Российской Федерации.
Россия
Москва.


А. В. Липатова
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук.
Россия
Москва.


А. С. Заседателев
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук; Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина Министерства здравоохранения Российской Федерации.
Россия
Москва.


А. В. Кудрявцева
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук; Национальный медицинский исследовательский центр радиологии Министерства здравоохранения Российской Федерации.
Россия
Москва.


Список литературы

1. Aiba Y., Yamazaki T., Okada T., Gotoh K., Sanjo H., Ogata M., Kurosaki T. BANK negatively regulates Akt activation and subsequent B cell responses. Immunity. 2006;24(3):259-268. DOI 10.1016/j.immuni.2006.01.002.

2. Alexandrov L.B., Nik-Zainal S., Wedge D.C., Aparicio S.A., Behjati S., Biankin A.V., Bignell G.R., Bolli N., Borg A., Børresen-Dale A.L., Boyault S., Burkhardt B., Butler A.P., Caldas C., Davies H.R., Desmedt C., Eils R., Eyfjörd J.E., Foekens J.A., Greaves M., Hosoda F., Hutter B., Ilicic T., Imbeaud S., Imielinski M., Jäger N., Jones D.T., Jones D., Knappskog S., Kool M., Lakhani S.R., López-Otín C., Martin S., Munshi N.C., Nakamura H., Northcott P.A., Pajic M., Papaemmanuil E., Paradiso A., Pearson J.V., Puente X.S., Raine K., Ramakrishna M., Richardson A.L., Richter J., Rosenstiel P., Schlesner M., Schumacher T.N., Span P.N., Teague J.W., Totoki Y., Tutt A.N., Valdés-Mas R., van Buuren M.M., van ‘t Veer L., Vincent-Salomon A., Waddell N., Yates L.R. Australian Pancreatic Cancer Genome Initiative; ICGC Breast Cancer Consortium; ICGC MMML-Seq Consortium; ICGC PedBrain, Zucman-Rossi J., Futreal P.A., McDermott U., Lichter P., Meyerson M., Grimmond S.M., Siebert R., Campo E., Shibata T., Pfister S.M., Campbell P.J., Stratton M.R. Signatures of mutational processes in human cancer. Nature. 2013;22;500(7463):415-421. DOI 10.1038/nature12477.

3. Benkusky N.A., Farrell E.F., Valdivia H.H. Ryanodine receptor channelopathies. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2004;322(4):12801285. DOI 10.1016/j.bbrc.2004.08.033.

4. Bouchalova K., Cizkova M., Cwiertka K., Trojanec R., Hajduch M. Triple negative breast cancer – current status and prospective targeted treatment based on HER1 (EGFR), TOP2A and C-MYC gene assessment. Biomed. Pap. Med. Fac. Univ. Palacky Olomouc Czech. Repub. 2009;153(1):13-17.

5. Davoli T., Uno H., Wooten E.C., Elledge S.J. Tumor aneuploidy correlates with markers of immune evasion and with reduced response to immunotherapy. Science. 2017;355(6322). DOI 10.1126/science.aaf8399.

6. Duffy D.L., Zhao Z.Z., Sturm R.A., Hayward N.K., Martin N.G., Montgomery G.W. Multiple pigmentation gene polymorphisms account for a substantial proportion of risk of cutaneous malignant melanoma. J. Invest. Dermatol. 2010;130(2):520-528. Epub 2009; Aug 27. DOI 10.1038/jid.2009.258.

7. Gellatly S.A., Kalujnaia S., Cramb G. Cloning, tissue distribution and sub-cellular localisation of phospholipase C X-domain containing protein (PLCXD) isoforms. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2012; 424(4):651-656. Epub 2012; Jun 22. DOI 10.1016/j.bbrc.012.06.079.

8. Hanahan D., Weinberg R.A. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 2011;144(5):646-674. DOI 10.1016/j.cell.2011.02.013.

9. Hawkes J.E., Cassidy P.B., Manga P., Boissy R.E., Goldgar D., CannonAlbright L., Florell S.R., Leachman S.A. Report of a novel OCA2 gene mutation and an investigation of OCA2 variants on melanoma risk in a familial melanoma pedigree. J. Dermatol. Sci. 2013;69(1):307. Epub 2012; Oct 13. DOI 10.1016/j.jdermsci.2012.09.016.

10. Hodi F.S., O’Day S.J., McDermott D.F., Weber R.W., Sosman J.A., Haanen J.B., Gonzalez R., Robert C., Schadendorf D., Hassel J.C., Akerley W., van den Eertwegh A.J., Lutzky J., Lorigan P., Vaubel J.M., Linette G.P., Hogg D., Ottensmeier C.H., Lebbé C., Peschel C., Quirt I., Clark J.I., Wolchok J.D., Weber J.S., Tian J., Yellin M.J., Nichol G.M., Hoos A., Urba W.J. Improved survival with ipilimumab in patients with metastatic melanoma. N. Engl. J. Med. 2010; 363(8):711-723. Epub 2010; Jun 5. DOI 10.1056/NEJMoa1003466.

11. Huang S.K., Hoon D.S. Liquid biopsy utility for the surveillance of cutaneous malignant melanoma patients. Mol. Oncol. 2016;10(3):450463. Epub 2015; Dec 17. DOI 10.1016/j.molonc.2015.12.008.

12. Katan M. New insights into the families of PLC enzymes: looking back and going forward. Biochem. J. 2005;391(3):e7-9. DOI 10.1042/BJ20051506.

13. Kozyrev S.V., Abelson A.K., Wojcik J., Zaghlool A., Linga Reddy M.V., Sanchez E., Gunnarsson I., Svenungsson E., Sturfelt G., Jönsen A., Truedsson L., Pons-Estel B.A., Witte T., D’Alfonso S., Barizzone N., Danieli M.G., Gutierrez C., Suarez A., Junker P., Laustrup H., González-Escribano M.F., Martin J., Abderrahim H., Alarcón-Riquelme M.E. Functional variants in the B-cell gene BANK1 are associated with systemic lupus erythematosus. Nat. Genet. 2008;40(2):211-216. DOI 10.1038/ng.79.

14. Krawczyk P., Kowalski D.M., Ramlau R., Kalinka-Warzocha E., Winiarczyk K., Stencel K., Powrózek T., Reszka K., Wojas-Krawczyk K., Bryl M., Wójcik-Superczyńska M., Głogowski M., Barinow-Wojewódzki A., Milanowski J., Krzakowski M. Comparison of the effectiveness of erlotinib, gefitinib, and afatinib for treatment of non-small cell lung cancer in patients with common and rare <i>EGFR</i> gene mutations. Oncol. Lett. 2017;(6):4433-4444. Epub 2017; Apr 3. DOI 10.3892/ol.2017.5980.

15. Leong S.P., Mihm M.C. Jr., Murphy G.F., Hoon D.S., Kashani-Sabet M., Agarwala S.S., Zager J.S., Hauschild A., Sondak V.K., Guild V., Kirkwood J.M. Progression of cutaneous melanoma: implications for treatment. Clin. Exp. Metastasis. 2012;29(7):775-796. DOI 10.1007/s10585-012-9521-1.

16. Martin-Liberal J., Larkin J. Vemurafenib for the treatment of BRAF mutant metastatic melanoma. Future Oncol. 2015;11(4):579-589. DOI 10.2217/fon.14.252.

17. Milik S.N., Lasheen D.S., Serya R.A.T., Abouzid K.A.M. How to train your inhibitor: Design strategies to overcome resistance to Epidermal Growth Factor Receptor inhibitors. Eur. J. Med. Chem. 2017;142:131-151. DOI 10.1016/j.ejmech.2017.07.023.

18. Monteith G.R., Davis F.M., Roberts-Thomson S.J. Calcium channels and pumps in cancer: changes and consequences. J. Biol. Chem. 2012;287(38):31666-31673. Epub 2012; Jul 20. DOI 10.1074/jbc. R112.343061.

19. Muhali F.S., Song R.H., Wang X., Shi X.H., Jiang W.J., Xiao L., Li D.F., He S.T., Xu J., Zhang J.A. Genetic variants of BANK1 gene in autoimmune thyroid diseases: a case-control association study. Exp. Clin. Endocrinol. Diabetes. 2013;121(9):556-560. Epub 2013; Oct 14. DOI 10.1055/s-0033-1348220.

20. Müller S., van den Boom D., Zirkel D., Köster H., Berthold F., Schwab M., Westphal M., Zumkeller W. Retention of imprinting of the human apoptosis-related gene TSSC3 in human brain tumors. Hum. Mol. Genet. 2000;22;9(5):757-763. PMID: 10749982.

21. O’Dowd B.F., Nguyen T., Jung B.P., Marchese A., Cheng R., Heng H.H., Kolakowski L.F. Jr., Lynch K.R., George S.R. Cloning and chromosomal mapping of four putative novel human G-proteincoupled receptor genes. Gene. 1997;187(1):75-81.

22. Pang Z.P., Yang N., Vierbuchen T., Ostermeier A., Fuentes D.R., Yang T.Q., Citri A., Sebastiano V., Marro S., Südhof T.C., Wernig M. Induction of human neuronal cells by defined transcription factors. Nature. 2011;26;476(7359):220-223. DOI 10.1038/nature10202.

23. Petrova G.V., Kaprin A.D., Starinskij V.V., Gretsova O.P. The incidence of malignant neoplasms in the Russian population. Onkologiya. Zhurnal imeni P.A. Gertsena = P.A. Herzen Journal of Oncology. 2014;2(5):5-10. (in Russian)

24. Rix U., Colinge J., Blatt K., Gridling M., Remsing Rix L.L., Parapatics K., Cerny-Reiterer S., Burkard T.R., Jäger U., Melo J.V., Bennett K.L., Valent P., Superti-Furga G. A target-disease network model of second-generation BCR-ABL inhibitor action in Ph+ ALL. PLoS One. 2013;8(10):e77155. DOI 10.1371/journal.pone.0077155.

25. Roh W., Chen P.L., Reuben A., Spencer C.N., Prieto P.A., Miller J.P., Gopalakrishnan V., Wang F., Cooper Z.A., Reddy S.M., Gumbs C., Little L., Chang Q., Chen W.S., Wani K., De Mace do M.P., Chen E., Austin-Breneman J.L., Jiang H., Roszik J., Tetzlaff M.T., Davies M.A., Gershenwald J.E., Tawbi H., Lazar A.J., Hwu P., Hwu W.J., Diab A., Glitza I.C., Patel S.P., Woodman S.E., Amaria R.N., Prieto V.G., Hu J., Sharma P., Allison J.P., Chin L., Zhang J., Wargo J.A., Futreal P.A. Integrated molecular analysis of tumor biopsies on sequential CTLA-4 and PD-1 blockade reveals markers of response and resistance. Sci. Transl. Med. 2017;9(379). DOI 10.1126/scitranslmed.aah3560. Erratum: Sci. Transl. Med. 2017. Apr 12;9(385).

26. Ryu B., Kim D.S., Deluca A.M., Alani R.M. Comprehensive expression profiling of tumor cell lines identifies molecular signatures of melanoma progression. PLoS One. 2007;2(7):e594. DOI 10.1371/journal.pone.0000594.

27. Schwienbacher C., Sabbioni S., Campi M., Veronese A., Bernardi G., Menegatti A., Hatada I., Mukai T., Ohashi H., Barbanti-Brodano G., Croce C.M., Negrini M. Transcriptional map of 170-kb region at chromosome 11p15.5: identification and mutational analysis of the BWR1A gene reveals the presence of mutations in tumor samples. Proc. Natl. Acad. Sci USA. 1998;95(7):3873-3878.

28. Shindo Y., Hazama S., Nakamura Y., Inoue Y., Kanekiyo S., Suzuki N., Takenouchi H., Tsunedomi R., Nakajima M., Ueno T., Takeda S., Yoshino S., Okuno K., Fujita Y., Hamamoto Y., Kawakami Y., Oka M., Nagano H. miR-196b, miR-378a and miR-486 are predictive biomarkers for the efficacy of vaccine treatment in colorectal cancer. Oncol. Lett. 2017;14(2):1355-1362. Epub 2017; Jun 2. DOI 10.3892/ol.2017.6303.

29. Sokolenko A.P., Imyanitov E.N. Molecular tests for the choice of cancer therapy. Curr. Pharm. Des. 2017; DOI 10.2174/1381612823666170719110125.

30. Szczepaniak Sloane R.A., Gopalakrishnan V., Reddy S.M., Zhang X., Reuben A., Wargo J.A. Interaction of molecular alterations with immune response in melanoma. Cancer. 2017;123(S11):2130-2142. DOI 10.1002/cncr.30681.28543700.

31. Tiffen J., Wilson S., Gallagher S.J., Hersey P., Filipp F.V. Somatic copy number amplification and hyperactivating somatic mutations of EZH2 correlate with DNA methylation and drive epigenetic silencing of genes involved in tumor suppression and immune responses in melanoma. Neoplasia. 2016;18(2):121-132. DOI 10.1016/j.neo.2016.01.003.

32. Wang T., Wang G., Hao D., Liu X., Wang D., Ning N., Li X. Aberrant regulation of the LIN28A/LIN28B and let-7 loop in human malignant tumors and its effects on the hallmarks of cancer. Mol. Cancer. 2015;14:125. DOI 10.1186/s12943-015-0402-5.

33. Yang S., Ji Y., Gattinoni L., Zhang L., Yu Z., Restifo N.P., Rosenberg S.A., Morgan R.A. Modulating the differentiation status of ex vivo-cultured anti-tumor T cells using cytokine cocktails. Cancer Immunol. Immunother. 2013;62(4):727-736. Epub 2012; Dec 4. DOI 10.1007/s00262-012-1378-2.

34. Yoo A.S., Sun A.X., Li L., Shcheglovitov A., Portmann T., Li Y., LeeMesser C., Dolmetsch R.E., Tsien R.W., Crabtree G.R. MicroRNAmediated conversion of human fibroblasts to neurons. Nature. 2011; 476(7359):228-231. DOI 10.1038/nature10323.


Дополнительные файлы

Просмотров: 126

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-0462 (Print)
ISSN 2500-3259 (Online)