Preview

Вавиловский журнал генетики и селекции

Расширенный поиск

Связь гаплотипов SNP LTR-области BLV с гематологическими показателями крови крупного рогатого скота

https://doi.org/10.18699/VJ19.491

Полный текст:

Аннотация

Проведено молекулярно-генетическое типирование образцов вируса лейкоза крупного рогатого скота (BLV), выделенного из образцов крови черно-пестрых голштинизированных коров, у которых были исследованы различные цитофлюорометрические и морфологические показатели крови. Оценивали общее содержание лейкоцитов (WBC), содержание лимфоцитов (lymf), гранулоцитов (gran), моноцитов (mon), эритроцитов (RBC), гемоглобина (HGB), гематокрит (HTC), средний объем эритроцитов (MCV), среднее содержание гемоглобина в одном эритроците (MCH), концентрацию гемоглобина в эритроцитарной массе (MCHC), индекс распределения эритроцитов (RDW), количество тромбоцитов (PLT), средний объем тромбоцитов (MPV), индекс распределения тромбоцитов (PDW) и тромбокрит (PCT). Определены гаплотипы SNP LTR-области BLV. Из восьми возможных были обнаружены только вирусы гаплотипов I (0.33±0.03) и III (0.67±0.03). Соотношение гематологически больных, здоровых и подозрительных носителей вируса лейкоза крупного рогатого скота I и III гаплотипов было сопоставимо с результатами других исследователей. Количество лейкоцитов, эритроцитов и тромбоцитов в крови носителей III гаплотипа превышало аналогичные параметры крупного рогатого скота, пораженного вирусом I гаплотипа. Интересно отметить, что разница гематологического статуса животных проявилась не только в концентрации лейкоцитов, непосредственных иммунных агентов, но и в содержании эритроцитов и тромбоцитов, не имеющих к иммунному ответу непосредственного отношения. Количество частиц III гаплотипа BLV, циркулирующих в крови зараженных особей, превышала таковое значение носителей I гаплотипа. В связи с этим выдвинуто предположение об эволюционном преимуществе III гаплотипа как более вирулентного. Впрочем, результаты настоящего исследования в совокупности с данными других ученых показывают, что высокая вирулентность отдельных штаммов вируса есть следствие стремления к реализации максимально возможной интенсивности синтеза вирусных частиц, а не достижения высокого поражающего эффекта как такового. Показано, что высокая смертоносность эволюционно невыгодна вирусам, так как вымирание носителя как биологического вида чревато исчезновением и самого вируса.

Об авторах

Н. В. Блажко
Новосибирский государственный аграрный университет
Россия


С. Х. Вышегуров
Новосибирский государственный аграрный университет
Россия


А. С. Донченко
Новосибирский государственный аграрный университет; Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук
Россия


К. С. Шатохин
Новосибирский государственный аграрный университет
Россия


Т. И. Крыцына
Новосибирский государственный аграрный университет
Россия


В. А. Рябинина
Новосибирский государственный аграрный университет
Россия


Список литературы

1. Acaite J., Tamosiunas V., Lukauskas K., Milius J., Pieskus J. The eradication experience of enzootic bovine leukosis from Lithuania. Prev. Vet. Med. 2007;82(1-2):83-89. DOI 10.1016/j.prevetmed. 2007.05.01.

2. Agol V.I. Nature of virus pathogenicity. Priroda = Nature. 2015;5: 3-10. (in Russian]

3. Barrick J.E., Yu D.S., Yoon S.H., Jeong H., Oh T.K., Schneider D., Lenski R.E., Kim J.F. Genome evolution and adaptation in a long-term experiment with Escherichia coli. Nature. 2009;461(7268):1243-1247. DOI 10.1038/nature08480.

4. Bateneva N.V. Features of the leukemic process in carriers of BLV genotypes 4 and 7. Innovatsii i Prodovolstvennaya Besopasnoct = Innovations and Food Safety. 2015;4(10):5-8. (in Russian)

5. Blood D.C., Henderson J.A., Radostits O.M. Veterinary Medicine: A textbook of the diseases of cattle, sheep, pigs, and horses. London: Balliere Tindall, 1979.

6. Buehring G.C., Philpott S.M., Choi K.Y. Humans have antibodies reactive with Bovine leukemia virus. AIDS Res. Hum. Retroviruses. 2003;19(12):1105-1113. DOI 10.1089/088922203771881202.

7. Debacq C., Sanchez Alcaraz M.T., Mortreux F., Kerkhofs P., Kettmann R., Willems L. Reduced proviral loads during primoinfection of sheep by Bovine Leukemia virus attenuated mutants. Retrovirology. 2004;1(31). DOI 10.1186/1742- 4690-1-31.

8. Elsworth P., Cooke B.D., Kovaliski J., Sinclair R., Holmes E.C., Strive T. Increased virulence of rabbit haemorrhagic disease virus associated with genetic resistance in wild Australian rabbits (Oryctolagus cuniculus). Virology. 2014;464- 465:415-423. DOI 10.1016/j.virol.2014.06.037.

9. Ernst L.K., Sulimova G.E., Orlova A.R. Peculiarities of distribution of Bola-A antigens and alleles of BoLA-DRB3 gene in black and white cattle due to association with leukemia. Russ. J. Genet. 1997; 33(1):73-80.

10. Fitzsimmons W.J., Woods R.J., McCrone J.T., Woodman A., Arnold J.J., Yennawar M., Evans R., Cameron C.E., Lauring A.S. A speed-fidelity trade-off determines the mutation rate and virulence of an RNA virus. PLoS Biol. 2018;16(6):e2006459. DOI 10.1371/journal.pbio.2006459.

11. Furió V., Garijo R., Durán M., Moya A., Bell J.C., Sanjuána R. Relationship between within-host fitness and virulence in the vesicular stomatitis virus: correlation with partial decoupling. J. Virol. 2012; 86(22):12228-12236. DOI 10.1128/ JVI.00755-12.

12. Gyles C. Should we be more concerned about bovine leukemia virus? Can Vet. J. 2016;57(2):115-116.

13. Juliarena M.A., Barrios C.N., Lützelschwab C.M., Esteban E.N., Gutiérrez S.E. Bovine leukemia virus: current perspectives. Vir. Adapt. Treat. 2017;(9):13-26. DOI 10.2147/ VAAT.S113947.

14. Kettmann R., Burny A., Callebaut I., Drogmans L., Mammerickx M., Willems L., Portetelle D. Bovine leukemia virus. Ed. J.A. Levy. The Retroviridae. New York: Plenum Press, 1994;39-82.

15. Kettmann R., Marbaix G., Cleuter Y., Portetelle D., Mammerickx M., Burny A. Genomic integration of bovine leukemia provirus and lack of viral RNA expression in the target cells of cattle with different responses to BLV infection. Leuk. Res. 1980;4(6):509-519.

16. Knapen K., Kerkhofs P., Mammerickx M. Eradication of enzootic bovine leukosis in Belgium: results of the mass detection on the national cattle population in 1989, 1990 and 1991. Ann. Med. Vet. 1993; 137:197-201.

17. Korboukh V.K., Lee C.A., Acevedo A., Vignuzzi M., Xiao Y., Arnold J.J., Hemperly S., Graci J.D., August A., Andino R., Cameron C.E. RNA Virus population diversity, an optimum for maximal fitness and virulence. J. Biol. Chem. 2014;289(43):29531-29544. DOI 10.1074/jbc.M114.592303.

18. Kozyreva N.G., Gulyukin M.I. The prevalence of cattle leukemia and genetic variants of its causative agent in livestock farms of the Central Federal District of the Russian Federation. Veterinariya Kubani = Veterinary of Kuban. 2017;6:4-9. (in Russian)

19. Lagarias M., Radke K. Transcriptional activation of bovine leukemia virus in blood cells from experimentally infected, asymptomatic sheep with latent infections. J. Virol. 1989;63:2099-2107.

20. Lakin G.F. Biometrics. Moscow: Vysshaya Shkola Publ., 1973. (in Russian) Lewin B. Genes IX. Oxford: Jones and Bartlett Publ., 2008.

21. Lezin A., Olindo S., Belrose G., Signate A., Cesaire R., Smadja D., Macallan D., Asquith B., Bangham C., Bouzar A., Gillet N., Defoiche J., Florins A., Verlaeten O., Burny A., Willems L. Gene activation therapy: from the BLV model to HAM/TSP patients. Front. Biosci. 2009; 1:205-215.

22. Markov A., Naimark E. Evolution. Classical Ideas in the Light of New Discoveries. Moscow: ACT: CORPUS Publ., 2015. (in Russian)

23. Merezak C., Pierreux C., Adam E., Lemaigre F., Rousseau G.G., Calomnie C., Van Lint C., Christophe D., Kerkhofs P., Burny A., Kettmann R., Willems L. Suboptimal enhancer sequences are required for efficient bovine leukemia virus propagation in vivo: implications for viral latency. J. Virol. 2001;75:6977- 6988. DOI 10.1128/JVI.75.15. 6977-6988.2001.

24. Mischenko V.A., Petrova O.N., Karaulov A.K., Mischenko A.V. Problems of Bovine Leukemia. Vladimir, 2018. (in Russian) Moelling K. Viruses: More Friends Than Foes. Singapore: World Scientific Publ., 2016. DOI 10.1142/10230.

25. Novikova M.V., Borovoy V.N., Barsukov Yu.I., Kolomytsev S.A. Epizootic situation with socially significant and highly infectious diseases of animals in the Russian Federation in 2017. Business Partner (Agriculture). Annual Handbook for Managers and Professionals in AIC, 2018. Available at: mvet/epizooticheskaya-situatsiya-po-sotsialno-znachimym-i-osobo-opasnym boleznyam-zhivotnykh. (in Russian)

26. Nuotio L., Rusanen H., Sihvonen L., Neuvonen E. Eradication of enzootic bovine leukosis from Finland. Prev. Vet. Med. 2003;59(1-2): 43-49.

27. Polat M., Takeshima S., Aida Y. Epidemiology and genetic diversity of bovine leukemia virus. Virol. J. 2017;14:209. DOI 10.1186/s12985-017-0876-4.

28. Smirnov P.N. The Disease of the Century: Bovine Leukemia. Novosibirsk, 2007. (in Russian)

29. Smirnov P.N., Bateneva N.V., Belyavskaya V.A. Genotypic diversity of bovine leukemia virus in the Novosibirsk and Krasnodar regions. Vestnik Novosibirskogo Gosudarstvennogo Agrarnogo Universiteta = Bulletin of the Novosibirsk State Agrarian University. 2011;2(18):81-83. (in Russian)

30. Smirnov P.N., Bateneva N.V., Knyazev S.P., Khripko Yu.I., Skachkov A.S. Method for the study of nucleotide sequences BVL. Mezhdunarodnyy Nauchno-Issledovatelskiy Zhurnal = International Research Journal. 2015;7(38):95-98. (in Russian)

31. Smirnov Yu.P., Suvorova I.L., Gryazeva N.A. Dynamics of the epizootic process of bovine leukemia in the Kirov region and the effectiveness of anti-leukemia measures. Agrarnaya Nauka Evro-Severo-Vostoka = Agricultural Science of the Euro-North-East. 2015;1(44): 60-65. (in Russian)

32. Syurin V.N., Samuylenko A.Ya., Solov’ev B.V., Fomina N.V. Viral Diseases of Animals. Moscow, All-Russia Research and Technology Institute of Bioindustry, 2001. (in Russian)

33. Zhivotovskiy L.A. Populational Biometry. Moscow: Nauka Publ., 1991. (in Russian)


Просмотров: 48


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-0462 (Print)
ISSN 2500-3259 (Online)