Альтернариозные пятнистости гуара

Однолетняя  бобоваякультурагуар (Cyamopsis tetragonoloba  (L.) Taub.) перспективна для выращивания на юге России. В 2018 г. были проведены фитосанитарные обследования посевов  гуара (13 коллекционных  образцов) в пяти филиалах ВИР (Краснодарский край, Дагестан, Астраханская и Волгоградская области). Во всех пунктах на листьях гуара отмечено несколько типов листовых пятнистостей,  среди  которых преобладали симптомы поражения растений  грибами  рода  Alternaria Nees. Видовой состав микромицетов идентифицировали с помощью микробиологических методов и высокопроизводительного секвенирования последовательности межгенного спейсера гена ядерной рибосомальной РНК (ITS2). Установлено, что грибы Alternaria spp. в различных эколого-географических условиях юга России вызывают два основных  типа пятнистостей  листьев: типичную (бежевые и бурые округлые пятна, обычно сопровождающиеся концентрической зональностью) и коричневую пятнистость  (мелкие бурые выпуклые сливающиеся  пятна). В большинстве случаев  поражение тканей листа вызвано  грибом A. tenuissima (Nees & T. Nees : Fr.) Wiltshire. Выявлена также сопутствующая микофлора (прежде всего, грибы рода Fusarium Link). Один из самых вредоносных патогенов  гуара в странах, где сосредоточены основные  посевные  площади  (Индия, Пакистан, США), – специализированный микромицет A. cyamopsidis Rangaswami & A.V. Rao на посевах в России не обнаружен.  Образцы гуара различаются по степени поражения возбудителем альтернариоза A. tenuissima. Показано дифференциальное взаимодействие паразита  и хозяина. Соответственно,  для предотвращения эпифитотий следует выращивать  сорта, защищенные  нетождественными генами устойчивости.  Во всех пунктах изучения  слабо поражались альтернариозом образцы  к-52568 (Аргентина) и к-52569 (Пакистан), ряд образцов был устойчив только в условиях одной или двух опытных станций. Изученные формы гетерогенны по устойчивости к патогену, что предоставляет возможность отбора резистентных к болезни линий из большей части коллекционных  образцов. Так, в различных филиалах ВИР из образцов к-52571, к-52573 и к-52580 отобраны растения без симптомов поражения, собран семенной материал, который может быть использован для создания  новых доноров устойчивости к болезни.

1. Вишнякова М.А., Буравцева Т.В., Булынцев С.В., Бурляева М.О., Семенова Е.В., Сеферова И.В., Александрова Т.Г., Яньков И.И., Егорова Г.П., Герасимова Т.В., Другова Е.В. Коллекция мировых генетических ресурсов зерновых бобовых ВИР: пополнение, сохранение и изучение. Методические указания. СПб.: ВИР, 2010.

2. Ганнибал Ф.Б. Мониторинг альтернариозов сельскохозяйственных культур и идентификация грибов рода Alternaria. СПб., 2011.

3. Лебедь Д.В., Костенкова Е.В., Волошин М.И. Агрономическое обоснование размещения посевов Cyamopsis tetragonoloba (L.) на юге европейской части России. Тавр. вестн. аграр. науки. 2017;1(9):53­64.

4. Радченко Е.Е., Соколова Д.В. Устойчивость гуара Cyamopsis tetragonolоba (L.) Taub. к вредным организмам. С.­х. биология. 2018; 53(5):897­906. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2018.5.897rus.

5. Boghara M.C., Dhaduk H.L., Kumar S., Parekh M.J., Patel N.J., Sharma R. Genetic divergence, path analysis and molecular diversity analysis in cluster bean (Cyamopsis tetragonoloba L. Taub.). Ind. Crops Prod. 2016;89:468­477. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2016.05.049.

6. Gandhi S.K., Chand J.N. Yield losses in guar due to bacterial blight caused by Xanthomonas campestris pv. cyamopsidis. Indian Phytopathol. 1985;38:516­519.

7. Gweon H.S., Oliver A., Taylor J., Booth T., Gibbs M., Read D.S., Griffiths R.I., Schonrogge K. PIPITS: an automated pipeline for analyses of fungal internal transcribed spacer sequences from the Illumina sequencing platform. Methods Ecol. Evol. 2015;6(7):973­980. https://doi.org/10.1111/2041­210X.12399.

8. Joshi U.N., Gupta P.P., Gupta V., Kumar S. Biochemical factors in cluster bean that impart Alternaria blight resistance. J. Mycol. Plant Pathol. 2004;34(2):581­583.

9. Kaur B., Purkayastha S., Dilbaghi N., Chaudhury A. Characterization of Xanthomonas axonopodis pv. cyamopsidis, the bacterial blight pathogen of cluster bean using PCR­based molecular markers. J. Phytopathol. 2005;153(7­8):470­479.

10. Kumar D. Status and direction of arid legumes research in India. Indian J. Agric. Sci. 2005;75(7):375­391.

11. Kumar S., Modi A.R., Parekh M.J., Mahla H.R., Sharma R., Fougat R.S., Yadav D., Yadav N.R., Patil G.B. Role of conventional and biotechnological approaches for genetic improvement of cluster bean. Ind. Crops Prod. 2017;97:639­648. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2017.01.008.

12. Malaghan S.N., Madalageri M.B., Ganiger V.M., Bhuvaneshwari G., Kotikal Y.K., Patil H.B. Genetic variability and heritability in cluster bean [Cyamopsis tetragonoloba (L.) Taub.] for vegetable pod yield and its component characters. Int. J. Agric. Sci. 2013;9(2): 765­768.

13. Meena A.K., Godara S.L., Gangopadhyay S., Ram J. Changes in biochemical constituents in cluster bean due to Alternaria cucumerina var. cyamopsidis. Ann. Plant Prot. Sci. 2012;20(2):386­388.

14. Pathak R. Clusterbean: Physiology, Genetics and Cultivation. Springer Science + Business Media Singapore, 2015. https://doi.org/10.1007/978­981­287­907­3_2.

15. Pavón M.Á., González I., Rojas M., Pegels N., Martin R., García T. PCR detection of Alternaria spp. in processed foods, based on the internal transcribed spacer genetic marker. J. Food Prot. 2011;74(2): 240­247. https://doi.org/10.4315/0362­028X.JFP­10­110.

16. Saharan M.S., Saharan G.S., Gupta P.P., Joshi U.N. Phenolic compounds and oxidative enzymes in cluster bean leaves in relation to Alternaria blight severity. Acta Phytopathol. Entomol. Hungarica. 2001;36(3/4):237­242.

17. Simmons E.G. Alternaria. An identification manual. CBS Biodiversity Series 6. Utrecht, Netherlands: CBS Fungal Biodiversity Centre, 2007. Vijayanand G.K., Shylaja M.D., Krishnappa M., Shetty H.S. An approach to obtain specific polyclonal antisera to Xanthomonas cam­ pestris pv. cyamopsidis and its potential application in indexing of infected seeds of guar. J. Appl. Microbiol. 1999;87(5):711­717. White T.J., Bruns T., Lee S., Taylor J. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: Innis M.A., Gelfand D.H., Sninsky J.J., White T.J. (Eds.) PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications. New York: Acad. Press, 1990;315­322.

18. Woudenberg J.H.C., Groenewald J.Z., Binder M., Crous P.W. Alternaria redefined. Stud. Mycol. 2013;75(1):171­212. https://doi.org/10.3114/sim0015.

19. Woudenberg J.H.C., Truter M., Groenewald J.Z., Crous P.W. Largespored Alternaria pathogens in section Porri disentangled. Stud. Mycol. 2014;79:1­47. https://doi.org/10.1016/j.simyco.2014.07.003.