Preview

Вавиловский журнал генетики и селекции

Расширенный поиск

Возможности и перспективы формирования генетической защиты мягкой пшеницы от стеблевой ржавчины в Западной Сибири

https://doi.org/10.18699/VJ20.679

Полный текст:

Аннотация

Современные исследования проблемы устойчивости мягкой пшеницы к стеблевой ржавчине включают два основных направления: оценку устойчивости коллекций мягкой пшеницы к заболеванию с помощью молекулярных маркеров к известным генам устойчивости в дополнение к полевому скринингу материала и лабораторным тестам к образцам различных популяций гриба; поиск источников и доноров новых генов и генных локусов, в том числе среди культурных и дикорастущих родичей пшеницы. Для достижения адекватного генетического контроля заболевания важен интегральный подход, включающий как данные об источниках устойчивости, так и актуальные сведения о действующих в регионе патогенных популяциях, их расовом составе и динамике генов вирулентности. Результаты анализа экспериментальных данных полевого скрининга устойчивости к стеблевой ржавчине сортов мягкой пшеницы из коллекции питомников CIMMYT в условиях Омской и Новосибирской областей, а также лабораторного тестирования образцов инфекции на международном наборе пшеничных линий-дифференциаторов позволяют предполагать, что на территории Западной Сибири и Алтайского края существует обособленная, «азиатская», популяция Puccinia graminis f. sp. tritici. При этом практический интерес для современных программ опережающей селекции пшеницы на иммунитет к стеблевой ржавчине в условиях Западной Сибири представляют гены устойчивости Sr2, Sr6Ai#2, Sr24, Sr25, Sr26, Sr31, Sr39, Sr40, Sr44 и Sr57. В настоящем обзоре проанализированы источники генов, сохраняющих эффективность к западносибирской популяции P. graminis, с целью упрощения первичного этапа отбора селекционного материала для создания устойчивого генотипа путем пирамидирования генов. Описаны основные требования, предъявляемые к фитопатологическому тестированию селекционного материала. Составлен список молекулярных маркеров к указанным генам устойчивости – как широко применяющихся в маркер-ориентированной селекции, так и требующих верификации.

Об авторах

В. Н. Кельбин
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


Е. С. Сколотнева
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


Е. А. Салина
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Россия
Новосибирск


Список литературы

1. Волкова Г.В., Шумилов Ю.В., Синяк Е.В., Ваганова О.Ф., Данилова А.В. Эффективные гены устойчивости пшеницы и ячменя к возбудителям ржавчины и их идентификация в перспективных сортообразцах. Труды 8-й Международной конференции «Биологическая защита растений – основа стабилизации агроэкосистем». Краснодар, 16–18 сентября 2014. Краснодар. 2014; 346-348.

2. Коваль С.Ф., Шаманин В.П., Коваль А.С. Стратегия и тактика отбора в селекции растений. Омск: Изд-во ФГБОУ ВПО ОмГАУ, 2010.

3. Лапочкина И.Ф., Баранова О.А., Гайнуллин Н.Р., Волкова Г.В., Гладкова Е.В., Ковалева Е.О., Осипова А.В. Создание линий озимой пшеницы с несколькими генами устойчивости к Puccinia graminis Pers. f. sp. tritici для использования в селекционных программах России. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018;22(6):676-684. DOI 10.18699/VJ18.410.

4. Рсалиев А.С., Рсалиев Ш.С. Основные подходы и достижения в изучении расового состава стеблевой ржавчины пшеницы. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018;22(8):967-977. DOI 10.18699/VJ18.439.

5. Сколотнева Е.С., Кельбин В.Н., Моргунов А.И., Бойко Н.И., Шаманин В.П., Салина Е.А. Расовый состав новосибирской популяции Puccinia graminis f. sp. tritici. Микология и фитопатология. 2020;54(1):49-58. DOI 10.31857/S0026364820010092.

6. Салина Е.А., Леонова И.Н., Щербань А.Б., Стасюк А.И. Способ создания линий озимой мягкой пшеницы с комплексной устойчивостью к бурой и стеблевой ржавчине и мучнистой росе. Патент РФ № 2598275. 2016.

7. Сочалова Л.П., Лихенко И.Е. Генетическое разнообразие яровой пшеницы по устойчивости к мигрирующим заболеваниям. Новосибирск: ООО Междуречье, 2015.

8. Шаманин В.П., Потоцкая И.В., Кузьмина С.П., Трущенко А.Ю., Чурсин А.С. Селекция яровой мягкой пшеницы на устойчивость к стеблевой ржавчине в Западной Сибири. Омск: Изд-во ФГБОУ ВПО ОмГАУ, 2015.

9. Addai D., Hafi A., Randall L., Tennant P., Arthur T., Gomboso J. Potential economic impacts of the wheat stem rust strain Ug99 in Australia. ABARES research report, prepared for the Plant Biosecurity Branch, Department of Agriculture and Water Resources. 2018. DOI 10.13140/RG.2.2.17341.72164.

10. Baranova O.A., Sibikeev S.N., Druzhin A.E. Molecular identification of the stem rust resistance genes in the introgression lines of spring bread wheat. Vavilov J. Genet. Breed. 2019;23(3):296-303. DOI 10.18699/VJ19.494.

11. Bariana H.S. Brown G.N., Bansal U.K., Miah H., Standen G.E., Lu M. Breeding triple rust resistant wheat cultivars for Australia using conventional and marker-assisted selection technologies. Aust. J. Agric. Resour. Econ. 2007;58(6):576-587. DOI 10.1071/AR07124.

12. Bernardo A.N., Bowden R.L., Rouse M.N., Newcomb M.S., Marshall D.S., Bai, G. Validation of molecular markers for new stem rust resistance genes in US hard winter wheat. Crop Sci. 2013;53(3): 755-764. DOI 10.2135/cropsci2012.07.0446.

13. Bhardwaj S.C., Prashar M., Jain S.K., Kumar S., Sharma Y.P. Physiologic specialization of Puccinia triticina on wheat (Triticum species) in India. Indian J. Agric. Sci. 2010;80(9):805.

14. Brown G.N. A seedling marker for gene Sr2 in wheat. Proceedings of the 10th Australian plant breeding conference. 1993;2:139-140. DOI 10.1007/s00122-010-1482-7.

15. Carver B.F., Rayburn A.L. Comparison of related wheat stocks possessing 1B or 1RS. 1BL chromosomes: agronomic performance. Crop Sci. 1994;34(6):1505-1510. DOI 10.2135/cropsci1994.0011183X003400060017x.

16. Cauderon Y., Saigne B., Dauge M. The resistance to wheat rusts of Agropyron intermedium and its use in wheat improvement. Proceedings of 4th Int. Wheat Genet. Symp. Columbia, Missouri, USA. 1973;401-407.

17. Dakouri A., McCallum B.D., Walichnowski A.Z., Cloutier S. Finemapping of the leaf rust Lr34 locus in Triticum aestivum (L.) and characterization of large germplasm collections support the ABC transporter as essential for gene function. Theor. Appl. Genet. 2010; 121(2):373-384. DOI 10.1007/s00122-010-1316-7.

18. Das B.K., Saini A., Bhagwat S.G., Jawali N. Development of SCAR markers for identification of stem rust resistance gene Sr31 in the homozygous or heterozygous condition in bread wheat. Plant Breed. 2006;125(6):544-549. DOI 10.1111/j.1439-0523.2006.01282.x.

19. Dundas I.S., Anugrahwati D.R., Verlin D.C., Park R.F., Bariana H.S., Mago R., Islam A.K.M.R. New sources of rust resistance from alien species: meliorating linked defects and discovery. Aust. J. Agric. Resour. Econ. 2007;58(6):545-549. DOI 10.1071/AR07056.

20. Flath K., Miedaner T., Olivera P.D., Rouse M.N., Yue J. Genes for wheat stem rust resistance postulated in German cultivars and their efficacy in seedling and adult-plant field tests. Plant Breed. 2018; 137(3):301-312. DOI 10.1111/pbr.12591.

21. Flor H.H. Inheritance of reaction to rust in flax. J. Agric. Res. 1947; 74(9):41.

22. Friebe B., Jiang J., Raupp W.J., McIntosh R.A., Gill B.S. Characterization of wheat-alien translocations conferring resistance to diseases and pests: current status. Euphytica. 1996;91(1):59-87. DOI 10.1007/BF00035277.

23. Hanzalova A., Dumalasova V., Zelba O. Wheat leaf rust (Puccinia triticina Eriks.) virulence frequency and detection of resistance genes in wheat cultivars registered in the Czech Republic in 2016–2018. Czech J. Genet. Plant Breed. 2020;56:87-92. DOI 0.17221/86/2019-CJGPB.

24. Hare R.A., McIntosh R.A. Genetic and cytogenetic studies of the durable adult plant resistance in Hope and related cultivars to wheat rusts. Z. Pf lanzenzuchtg. 1979;83:350-67.

25. Jin Y., Singh R.P., Ward R.W., Wanyera R., Kinyua M., Njau P., Fetch T., Pretorius Z.A., Yahyaoui A. Characterization of seedling infection types and adult plant infection responses of monogenic Sr gene lines to race TTKS of Puccinia graminis f. sp. tritici. Plant Dis. 2007;91(9):1096-1099. DOI 10.1094/PDIS-91-9-1096.

26. Jin Y., Szabo L.J., Pretorius Z.A., Singh R.P., Ward R., Fetch T., Jr. Detection of virulence to resistance gene Sr24 with in race TTKS of Puccinia graminis f. sp. tritici. Plant Dis. 2008;92:923-926. DOI 10.1094/PDIS-92-6-0923.

27. Karelov A.V., Pirko Y.V., Kozub N.A., Sozinov I.A., Pirko N.N., Litvinenko N.A., Lyfenko S.F., Koliuchii V.T., Blume Ya.B., Sozinov A.A. Identification of the allelic state of the Lr34 leaf rust resistance gene in soft winter wheat cultivars developed in Ukraine. Cytol. Genet. 2011;45(5):271. DOI 10.3103/S0095452711050069.

28. Kerber E.R., Dyck P.L. Transfer to hexaploid wheat of linked genes for adult-plant leaf rust and seedling stem rust resistance from an amphiploid of Aegilops speltoides × Triticum monococcum. Genome. 1990;33(4):530-537. DOI 10.1139/g90-079.

29. Knott D.R. The inheritance of rust resistance. VI. The transfer of stem rust resistance from Agropyron elongatum to common wheat. Can. J. Plant Sci. 1961;41(1):109-123. DOI 10.4141/cjps61-014.

30. Kolmer J.A. Virulence of Puccinia triticina, the wheat leaf rust fungus, in the United States in 2017. Plant Dis. 2019;103(8):2113-2120. DOI 10.1094/PDIS-09-18-1638-SR.

31. Kolmer J.A., Singh R.P., Garvin D.F., Viccars L., William H.M., Huerta-Espino J., Ogbonnaya F.C., Raman H., Orford S., Bariana H.S., Lagudah E.S. Analysis of the Lr34/Yr18 rust resistance region in wheat germplasm. Crop Sci. 2008;48(5):1841-1852. DOI 10.2135/cropsci2007.08.0474.

32. Krattinger S.G., Lagudah E.S., Spielmeyer W., Singh R.P., Huerta-Espino J., McFadden H., Bossolini E., Selter L.L., Keller B. A putative ABC transporter confers durable resistance to multiple fungal pathogens in wheat. Science. 2009;323(5919):1360-1363. DOI 10.1126/science.1166453.

33. Labuschagne M.T., Pretorius Z.A., Grobbelaar B. The influence of leaf rust resistance genes Lr29, Lr34, Lr35 and Lr37 on breadmaking quality in wheat. Euphytica. 2002;124(1):65-70. DOI 10.1023/A:1015683216948.

34. Lagudah E.S., Krattinger S.G., Herrera-Foessel S.A., Singh R.P., Huerta-Espino J., Spielmeyer W., Brown-Guedira G., Selter L.L., Keller B. Gene-specific markers for the wheat gene Lr34/Yr18/Pm38 which confers resistance to multiple fungal pathogens. Theor. Appl. Genet. 2009;119(5):889-898. DOI 10.1007/s00122-009-1097-z.

35. Lagudah E.S., McFadden H., Singh R.P., Huerta-Espino J., Bariana H.S., Spielmeyer W. Molecular genetic characterization of the Lr34/Yr18 slow rusting resistance gene region in wheat. Theor. Appl. Genet. 2006;114(1):21-30. DOI 10.1007/s00122-006-0406-z.

36. Lelley T., Eder C., Grausgruber H. Influence of 1BL. 1RS wheat-rye chromosome translocation on genotype by environment interaction. J. Cereal Sci. 2004;39(3):313-320. DOI 10.1016/j.jcs.2003.11.003.

37. Leonova I.N., Skolotneva E.S., Orlova E.A., Orlovskaya O.A., Salina E.A. Detection of genomic regions associated with resistance to stem rust in Russian spring wheat varieties and breeding germplasm. Int. J. Mol. Sci. 2020;21(13):4706. DOI 10.3390/ijms21134706.

38. Lewis C.M., Persoons A., Bebber D.P., Kigathi R.N., Maintz J., Findlay K., Bueno-Sancho V., Corredor-Moreno P., Harrington S.A., Kangara N., Berlin A., García R., Germán S.E., Hanzalová A., Hodson D.P., Hovmøller M.S., Huerta-Espino J., Imtiaz M., Mirza J.I., Justesen A.F., Niks R.E., Omrani A., Patpour M., Pretorius Z.A., Roohparvar R., Sela H., Singh R.P., Steffenson B., Visser B., Fenwick P.M., Thomas J., Wulff B.B.H., Saunders D.G.O. Potential for re-emergence of wheat stem rust in the United Kingdom. Commun. Biol. 2018;1(1):1-9. DOI 10.1038/s42003-018-0013-y.

39. Li T.Y., Wu X.X., Xu X.F., Wang W.L., Cao Y.Y. Postulation of seedling stem rust resistance genes of Yunnan wheat cultivars in China. Plant Prot. Sci. 2016;52:242-249. DOI 10.17221/137/2015-PPS.

40. Liu S., Yu L.X., Singh R.P., Jin Y., Sorrells M.E., Anderson J.A. Diagnostic and co-dominant PCR markers for wheat stem rust resistance genes Sr25 and Sr26. Theor. Appl. Genet. 2010;120(4):691-697. DOI 10.1007/s00122-009-1186-z.

41. Liu W., Danilova T.V., Rouse M.N., Bowden R.L., Friebe B., Gill B.S., Pumphrey M.O. Development and characterization of a compensating wheat-Thinopyrum intermedium Robertsonian translocation with Sr44 resistance to stem rust (Ug99). Theor. Appl. Genet. 2013; 126(5):1167-1177. DOI 10.1007/s00122-013-2044-6.

42. Mago R., Bariana H.S., Dundas I.S., Spielmeyer W., Lawrence G.J., Pryor A.J., Ellis J.G. Development of PCR markers for the selection of wheat stem rust resistance genes Sr24 and Sr26 in diverse wheat germplasm. Theor. Appl. Genet. 2005;111(3):496-504. DOI 10.1007/s00122-005-2039-z.

43. Mago R., Simkova H., Brown-Guedira G., Dreisigacker S., Breen J., Jin Y., Singh R., Appels R., Lagudah E.S., Ellis J., Dolezel J., Spielmeyer W. An accurate DNA marker assay for stem rust resistance gene Sr2 in wheat. Theor. Appl. Genet. 2011;122(4):735-744. DOI 10.1007/s00122-010-1482-7.

44. Mago R., Zhang P., Bariana H.S., Verlin D.C., Bansal U.K., Ellis J.G., Dundas I.S. Development of wheat lines carrying stem rust resistance gene Sr39 with reduced Aegilops speltoides chromatin and simple PCR markers for marker-assisted selection. Theor. Appl. Genet. 2009;119(8):1441-1450. DOI 10.1007/s00122-009-1146-7.

45. McFadden E.S. A Successful Transfer of Emmer Characters to Vulgare Wheat 1. Agron. J. 1930;22(12):1020-1034. DOI 10.2134/agronj1930.00021962002200120005x.

46. McIntosh R.A. The role of specific genes in breeding for durable stem rust resistance in wheat and triticale. Breeding strategies for resistance to the rusts of wheat. CIMMYT. Mexico. 1988;1-9.

47. McIntosh R.A., Dubcovsky J., Rogers J.W., Morris C.F., Appels R., Xia X.C. Catalogue of gene symbols for wheat: 2011 supplement. Annual Wheat Newsletter. 2010;57.

48. McIntosh R.A., Hart G., Gale M. Catalogue of gene symbols for wheat. Proc. of the 8th Intern. Wheat Genet. Symp. China. 1993;1333-1500.

49. McVey D.V., Roelfs A.P. Postulation of genes for stem rust resistance in the entries of the fourth international winter wheat performance nursery. Crop Sci. 1975;15(3):335-337. DOI 10.2135/cropsci1975.0011183X001500030016x.

50. Manjunatha C., Aggarwal R., Bhardwaj S.C., Sharma S. Virulence analysis and molecular characterization of Puccinia triticina pathotypes causing wheat leaf rust in India. J. Biotech. Res. 2015;10:98-107.

51. Morgounov A., Abugalieva A., Martynov S. Effect of climate change and variety on long-term variation of grain yield and quality in winter wheat in Kazakhstan. Cereal Res. Commun. 2014;42(1):163-172.

52. Nemati Z., Mostowfizadeh-Ghalamfarsa R., Dadkhodaie A., Mehrabi R., Steffenson B.J. Virulence of Leaf Rust Physiological Races in Iran from 2010 to 2017. Plant Dis. 2020;104(2):363-372. DOI 10.1094/PDIS-06-19-1340-RE.

53. Park R.F., Bariana H.S., Wellings C.R., Wallwork H. Detection and occurrence of a new pathotype of Puccinia triticina with virulence for Lr24 in Australia. Crop Pasture Sci. 2002;53(9):1069-1076. DOI 10.1071/AR02018.

54. Patpour M., Hovmøller M.S., Justesen A.F., Newcomb M., Olivera P.D., Jin Y., Szabo L.J., Hodson D., Shahin A.A., Wanyera R., Habarurema I., Wobibi S. Emergence of virulence to SrTmp in the Ug99 race group of wheat stem rust, Puccinia graminis f. sp. tritici, in Africa. Plant Dis. 2016;100(2):522-522. DOI 10.1094/PDIS-06-15-0668-PDN.

55. Prasad P., Bhardwaj S.C., Khan H., Gangwar O.P., Kumar S., Singh S.B. Ug99: saga, reality and status. Curr. Sci. 2016;110(9):1614-1616.

56. Pretorius Z.A., Bender C.M., Visser B., Terefe T. First report of a Puccinia graminis f. sp. tritici race virulent to the Sr24 and Sr31 wheat stem rust resistance genes in South Africa. Plant Dis. 2010;94:784. DOI 10.1094/PDIS-94-6-0784C.

57. Prins R., Groenewald J.Z., Marais G.F., Snape J.W., Koebner R.M.D. AFLP and STS tagging of Lr19, a gene conferring resistance to leaf rust in wheat. Theor. Appl. Genet. 2001;103(4):618-624. DOI 10.1007/PL00002918.

58. Rabinovich S.V. Importance of wheat-rye translocations for breeding modern cultivar of Triticum aestivum L. Euphytica. 1998;100(1-3): 323-340. DOI 10.1023/A:1018361819215.

59. Roelfs A.P. Resistance to leaf and stem rusts in wheat. Breeding strategies for resistance to the rusts of wheat. (CIMMYT) 29 Jun – 1 Jul 1987. El Batan, Mexico, 1988.

60. Roux J.L. First report of a Puccinia graminis f. sp. tritici race with virulence for Sr24 in South Africa. Plant Dis. 1985;69(11).

61. Salina E.A., Adonina I.G., Badaeva E.D., Kroupin P.Y., Stasyuk A.I., Leonova I.N., Shishkina A.A., Divashuk M.G., Starikova E.V., Khuat T.M., Syukov V.V., Karlov G.I. A Thinopyrum intermedium chromosome in bread wheat cultivars as a source of genes conferring resistance to fungal diseases. Euphytica. 2015;204(1):91-101. DOI 10.1007/s10681-014-1344-5.

62. Schlegel R. Current list of wheats with rye and alien introgression. V. 05. 2010;8:1-14.

63. Sears E.R. Agropyron-wheat transfers induced by homoeologous pairing. Proceedings. Fourth International Wheat Genetics Symposium. Columbia. MO. Agriculture Experiment Station. College of Agriculture. University of Missouri. Columbia. 1973;191-199.

64. Shamanin V., Morgounov A., Petukhovskiy S., Likhenko I. The problem of climate warming and the objectives of spring soft wheat breeding in Western Siberia. Intern. Plant Breeding Cong.: Abstract book. 10-14 November 2013. Antalya, Turkey. 2013;217.

65. Shamanin V., Pototskaya I., Shepelev S., Pozherukova V., Salina Е., Skolotneva Е., Hodson D., Hovmøller M., Patpour M., Morgounov A. Stem rust in Western Siberia – race composition and effective resistance genes. Vavilov J. Genet. Breed. 2020;24(2):131-138 DOI 10.18699/VJ20.608.

66. Shamanin V., Salina E., Wanyera R., Zelenskiy Y., Olivera P., Morgounov A. Genetic diversity of spring wheat from Kazakhstan and Russia for resistance to stem rust Ug99. Euphytica. 2016;212(2): 287-296. DOI 10.1007/s10681-016-1769-0.

67. Sharma A.K., Saharan M.S., Bhardwaj S.C., Prashar M., Chatrath R., Tiwari V., Singh M., Sharma I.N.D.U. Evaluation of wheat (Triticum aestivum) germplasm and varieties against stem rust (Puccinia graminis f. sp. tritici) pathotype Ug99 and its variants. Indian Phytopathology. 2015;68(2):134-138.

68. Simmonds N.W., Rajaram S. (Ed.). Breeding strategies for resistance to the rusts of wheat. CIMMYT, 1988.

69. Singh N.K., Shepherd K.W., McIntosh R.A. Linkage mapping of genes for resistance to leaf, stem and stripe rusts and ω-secalins on the short arm of rye chromosome 1R. Theor. Appl. Genet. 1990;80(5): 609-616. DOI 10.1007/BF00224219.

70. Singh R.P., Hodson D.P., Jin Y., Huerta-Espino J., Kinyua M., Wanyera R., Njau P., Ward R. Current status, likely migration and strategies to mitigate the threat to wheat production from race Ug99 (TTKS) of stem rust pathogen. CAB reviews: perspectives in agriculture, veterinary science, nutrition and natural resources. 2006;1(54):1-13. DOI 10.1079/PAVSNNR20061054.

71. Singh R.P., Hodson D.P., Huerta-Espino J., Jin Y., Bhavani S., Njau P., Herrera-Foessel S., Singh P.K., Singh S., Govindan V. The emergence of Ug99 races of the stem rust fungus is a threat to world wheat production. Annu. Rev. Phytopathol. 2011;49:465-481. DOI 10.1146/annurev-phyto-072910-095423.

72. Singh R.P., Singh P.K., Rutkoski J., Hodson D.P., He X., Jørgensen L.N., Hovmøller M.S., Huerta-Espino J. Disease impact on wheat yield potential and prospects of genetic control. Annu. Rev. Phytopathol. 2016;54:303-322. DOI 10.1146/annurev-phyto-080615-095835.

73. Skolotneva E.S., Kosman E., Patpour M., Kelbin V.N., Morgounov A., Shamanin V.P., Salina E.A. Virulence Phenotypes of Siberian Wheat Stem Rust Population in 2017-2018. Front. Agron. 2020;2:6. DOI 10.3389/fagro.2020.00006.

74. Skolotneva E.S., Leonova I.N., Bukatich E.Y., Boiko N.I., Piskarev V.V., Salina E.A. Effectiveness of leaf rust resistance genes against Puccinia triticina populations in Western Siberia during 2008–2017. J. Plant Dis. Prot. 2018;125(6):549-555. DOI 10.1007/s41348-018-0191-3.

75. Smith E.L., Schlehuber A.M., Young Jr H.C., Edwards L.H. Registration of Agent Wheat (Reg. No. 471). Crop Sci. 1968;8(4):511-512. DOI 10.2135/cropsci1968.0011183X000800040039x.

76. Soresa D.N. Evaluation of bread wheat (Triticum aestivum L.) genotypes for resistance against stem rust (Puccinia graminis f. sp. tritici) diseases at seedling and adult stages. Afr. J. Agric. Res. 2018;13(52): 2904-2910. DOI 10.5897/AJAR2018.13244.

77. Spielmeyer W., Sharp P.J., Lagudah E.S. Identification and validation of markers linked to broad‐spectrum stem rust resistance gene Sr2 in wheat (Triticum aestivum L.). Crop Sci. 2003;43(1):333-336. DOI 10.2135/cropsci2003.0333.

78. Stakman E.C., Stewart D.M., Loegering W.Q. Identification of physiologic races of Puccinia graminis var. tritici. Washington: USDA, 1962.

79. Weng Y., Azhaguvel P., Devkota R.N., Rudd J.C. PCR‐based markers for detection of different sources of 1AL.1RS and 1BL.1RS wheatrye translocations in wheat background. Plant Breed. 2007;126(5): 482-486. DOI 10.1111/j.1439-0523.2007.01331.x.

80. Wu S., Pumphrey M., Bai G. Molecular mapping of stem-rust-resistance gene Sr40 in wheat. Crop Sci. 2009;49(5):1681-1686. DOI 10.2135/cropsci2008.11.0666.

81. Zhang W., Lukaszewski A.J., Kolmer J., Soria M.A., Goyal S., Dubcovsky J. Molecular characterization of durum and common wheat recombinant lines carrying leaf rust resistance (Lr19) and yellow pigment (Y) genes from Lophopyrum ponticum. Theor. Appl. Genet. 2005;111:573-582. DOI 10.1007/s00122-005-2048-y.

82. Zhou Y., He Z.H., Liu J.J., Liu L. Distribution of 1BL/1RS translocation in Chinese winter wheat and its effect on noodle quality. Proc. of 10th Intern. Wheat Genet. Symp. Paestum. 2003;3:1419-1421. DOI 10.1016/j.fcr.2011.11.008.


Просмотров: 58


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-0462 (Print)
ISSN 2500-3259 (Online)