Скорость роста и продуктивность бройлерного кросса кур с разными полиморфными типами гена миостатина
https://doi.org/10.18699/VJ16.154
Аннотация
Поиск однонуклеотидных замен (SNP) в гене миостатина является перспективным направлением исследований, так как этот ген вовлечен в формирование важных биологических и продуктивных свойств у кур. С помощью метода ПЦР-ПДРФ проведен анализ частот аллелей и генотипов у кур породы корниш промышленной линии Г5 кросса «Смена-8». Использовали две пары праймеров, позволяющих получить ПЦР-продукт в участке гена миостатина. Рассмотрены две однонуклеотидные замены в экзоне 1 гена миостатина: G/A в положении MST2109 и G/С в положении MST2244. По частоте встречаемости обнаружено существенное преобладание в локусе MST2244 дезоксинуклеозидтрифосфата G над С и в локусе MST2109 – A над G. Различий по показателям продуктивности между генотипами при замене MST2109 обнаружено не было. При анализе аллельного разнообразия по локусу MST2244 обнаружены достоверные различия по живой массе цыплят в возрасте 7 дней между генотипами CC и G2G2 (p < 0,01), CG2 и G2G2 (p < 0,05). Особи с генотипом G2G2 (203,52 г) превосходили животных с генотипами СС (179,5 г) и CG2 (193,95 г) по живой массе в 7 дней. Выявлены различия между генотипами СС и G2G2 по живой массе в 33 дня (p < 0,05). Таким образом, проведенные исследования позволили оценить частоту встречаемости аллелей в гене миостатина линии Г5 породы корниш. Установленные закономерности дадут возможность учитывать определенные генотипы кур по гену миостатина для ускорения селекционного процесса.
Об авторах
Н. В. ДементьеваРоссия
О. В. Митрофанова
Россия
В. И. Тыщенко
Россия
В. П. Терлецкий
Россия
А. Ф. Яковлев
Россия
Список литературы
1. Дементьева Н.В., Терлецкий В.П., Тыщенко В.И., Яковлев А.Ф. Использование метода фингерпринтинга ДНК для изучения генетической дивергенции в популяциях сельскохозяйственных животных. Вестн. РАСХН. 2003;1:79-80.
2. Животовский Л.А. Популяционная биометрия. М., 1991.
3. Тыщенко В.И., Дементьева Н.В., Терлецкий В.П., Яковлев А.Ф. Оценка генетического разнообразия в популяциях кур на основе геномной дактилоскопии. С.-х. биология. 2002;6:43-46.
4. Яковлев А.Ф., Терлецкий В.П., Сэксте Э.А., Тучемский Л.И., Емануйлова Ж.В. Влияние гена гормона роста на хозяйственные признаки птицы. Птицеводство. 2013;1:2-4.
5. Baron E.E., Wenceslau A.A., Alvares L.E., Nones K., Ruy D.C., Schmidt G.S., Zanella E.L., Coutinho L.L., Ledur M.C. High level of polymorphism in the myostatin chicken gene. Proc. 7th World Congr. Genet. Appl. Livest. Prod. Montpellier. 19–23 August, 2002.
6. Grobet L., Poncelet D., Royo L.J., Brouwers B., Pirottin D., Michaux C., Ménissier F., Zanotti M., Dunner S., Georges M. Molecular definition of an allelic series of mutations disrupting the myostatin function and causing double muscling in cattle. Mammal. Genome. 1998;9(3):210-213.
7. Hu W., Chen S., Zhang R., Liu Y. Single nucleotide polymorphisms in the upstream regulatory region alter the expression of myostatin. In Vitro Cell. Dev. Biol. Anim. 2013;49(6):417-423. DOI 10.1007/s11626-013-9621-5
8. Kambadur R., Sharma M., Smith T.P.L., Bass J.J. Mutations in myostatin (GDF8) in double-muscled Belgian Blue and Piedmontese cattle. Genome Res. 1997;7(9):910-915.
9. McCroskery S., Thomas M., Maxwell L., Sharma M., Kambadur R. Myostatin negatively regulates satellite cell activation and self-renewal. J. Cell. Biol. 2003;162(6):1135-1147.
10. McPherron A.C., Lawler A.M., Lee S.J. Regulation of skeletal muscle mass in mice by a new TGF-beta superfamily member. Nature. 1997;387(6628):83-90.
11. McPherron A.C., Lee S.J. Double muscling in cattle due to mutations in the myostatin gene. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1997;94(123):12457-12461.
12. Thomas M., Langley B., Berry C., Sharma M., Kirk S., Bass J., Kambadur R. Myostatin, a negative regulator of muscle growth, functions by inhibiting myoblast proliferation. J. Biol. Chem. 2000;275(51): 40235-40243.
13. Ye X., Brown S.R., Nones K., Coutinho L.L., Dekkers J.C., Lamont S. J. Associations of myostatin gene polymorphisms with performance and mortality traits in broiler chickens. Genet. Sel. Evol. 2007;39(1): 73-89.
14. Zhang G.X., Zhao X.H., Wang J.Y., Ding F.X., Zhang L. Effect of exon 1 mutation in the myostatin gene on the growth traits of the Bian chicken. Anim. Genet. 2012;43(4):458-459. DOI 10.1111/j.1365-2052.2011.02274.x
15. Zhiliang G., Dahai Z., Ning L., Hui L., Xuemei D., Changxin W. The single nucleotide polymorphisms of the chicken myostatin gene are associated with skeletal muscle and adipose growth. Sci. China C. Life Sci. 2004;47(1):25-30.